Tom 18, Nr 2 (2023)
Inne materiały uzgodnione z Redakcją
Opublikowany online: 2023-09-28
Wyświetlenia strony 1147
Wyświetlenia/pobrania artykułu 15
Pobierz cytowanie

Eksport do Mediów Społecznościowych

Eksport do Mediów Społecznościowych

Patofizjologia zwapnień w tętnicach wieńcowych

Natalia Kachnic1, Karolina Gutkowska1, Justyna Barycz1, Jarosław Zalewski2, Jadwiga Nessler2, Krzysztof Karwat2
Kardiol Inwazyjna 2023;18(2):81-85.

Streszczenie

Na tworzenie blaszek miażdżycowych w tętnicach wieńcowych wpływają czynniki mechaniczne związane z zaburzeniami przepływu krwi oraz czynniki uszkadzające tętnice wieńcowe, prowadząc do nieprawidłowego przekazywania sygnałów między komórkami, nieprawidłowego ich wzrostu i sekrecji oraz apoptozy. Zwapnienia blaszek miażdżycowych stwierdzane są u jednej trzeciej pacjentów z chorobą wieńcową, w szczególności z zaawansowaną postacią choroby. Zwapnienia mogą być umiejscowione w intimie oraz medii. Na powstawanie zwapnień w intimie wpływa podeszły wiek, nadciśnienie tętnicze, cukrzyca, dyslipidemia i nikotynizm. Proces tworzenia blaszek miażdżycowych zostaje zapoczątkowany w śródbłonku naczyń wieńcowych, obejmując akumulację lipidów w makrofagach, następnie ich apoptozę i prowadząc do powstania rdzenia nekrotycznego. Postępujące zwapnienie rdzenia nekrotycznego obejmuje powstawanie mikrozwapnień, które łączą się w większe konglomeraty. Mikrozwapnienia i zwapnienia punktowe stanowią aktywne zapalnie formy zwapnień, występujące częściej u pacjentów objawowych oraz są dodatnio skorelowane z ryzykiem pęknięcia blaszki. Natomiast zwapnienia w medii są głównie wynikiem wytrącania fosforanu wapnia i transformacji osteoblastycznej oraz są stwierdzane u pacjentów z zaawansowaną niewydolnością nerek. Zwapnienia o większych rozmiarach mogą stabilizować blaszkę miażdżycową.

Artykuł dostępny w formacie PDF

Dodaj do koszyka: 49,00 PLN

Posiadasz dostęp do tego artykułu?

Referencje

  1. World Health Organization. Cardiovascular diseases (CVDs) Fact Sheet. 2017.
  2. Benjamin EJ, Blaha MJ, Chiuve SE, et al. American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee. Heart Disease and Stroke Statistics-2017 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 2017; 135(10): e146–e603.
  3. Ference BA, Ginsberg HN, Graham I, et al. Low-density lipoproteins cause atherosclerotic cardiovascular disease. 1. Evidence from genetic, epidemiologic, and clinical studies. A consensus statement from the European Atherosclerosis Society Consensus Panel. Eur Heart J. 2017; 38(32): 2459–2472.
  4. Nordestgaard BG, Chapman MJ, Humphries SE, et al. European Atherosclerosis Society Consensus Panel. Familial hypercholesterolaemia is underdiagnosed and undertreated in the general population: guidance for clinicians to prevent coronary heart disease: consensus statement of the European Atherosclerosis Society. Eur Heart J. 2013; 34(45): 3478–90a.
  5. Nordestgaard BG, Chapman MJ, Humphries SE, et al. European Atherosclerosis Society Consensus Panel. Familial hypercholesterolaemia is underdiagnosed and undertreated in the general population: guidance for clinicians to prevent coronary heart disease: consensus statement of the European Atherosclerosis Society. Eur Heart J. 2013; 34(45): 3478–90a.
  6. Gisterå A, Hansson GK. The immunology of atherosclerosis. Nat Rev Nephrol. 2017; 13(6): 368–380.
  7. Libby P, Buring JE, Badimon L, et al. Atherosclerosis. Nat Rev Dis Primers. 2019; 5(1): 56.
  8. Nus M, Mallat Z. Immune-mediated mechanisms of atherosclerosis and implications for the clinic. Expert Rev Clin Immunol. 2016; 12(11): 1217–1237.
  9. Geng YJ, Libby P. Evidence for apoptosis in advanced human atheroma. Colocalization with interleukin-1 beta-converting enzyme. Am J Pathol. 1995; 147(2): 251–266.
  10. Libby P. Mechanisms of acute coronary syndromes and their implications for therapy. N Engl J Med. 2013; 368(21): 2004–2013.
  11. Ruiz JL, Hutcheson JD, Aikawa E. Cardiovascular calcification: current controversies and novel concepts. Cardiovasc Pathol. 2015; 24(4): 207–212.
  12. Peled M, Fisher EA. Dynamic Aspects of Macrophage Polarization during Atherosclerosis Progression and Regression. Front Immunol. 2014; 5: 579.
  13. Stöger JL, Gijbels MJJ, van der Velden S, et al. Distribution of macrophage polarization markers in human atherosclerosis. Atherosclerosis. 2012; 225(2): 461–468.
  14. Tabas I. The role of endoplasmic reticulum stress in the progression of atherosclerosis. Circ Res. 2010; 107(7): 839–850.
  15. Saito A, Ochiai K, Kondo S, et al. Endoplasmic reticulum stress response mediated by the PERK-eIF2(alpha)-ATF4 pathway is involved in osteoblast differentiation induced by BMP2. J Biol Chem. 2011; 286(6): 4809–4818.
  16. Reith S, Milzi A, Dettori R, et al. Predictors for target lesion microcalcifications in patients with stable coronary artery disease: an optical coherence tomography study. Clin Res Cardiol. 2018; 107(9): 763–771.
  17. Otsuka F, Sakakura K, Yahagi K, et al. Has our understanding of calcification in human coronary atherosclerosis progressed? Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014; 34(4): 724–736.
  18. Nadra I, Mason JC, Philippidis P, et al. Proinflammatory activation of macrophages by basic calcium phosphate crystals via protein kinase C and MAP kinase pathways: a vicious cycle of inflammation and arterial calcification? Circ Res. 2005; 96(12): 1248–1256.
  19. Vesey AT, Jenkins WSA, Irkle A, et al. F-Fluoride and F-Fluorodeoxyglucose Positron Emission Tomography After Transient Ischemic Attack or Minor Ischemic Stroke: Case-Control Study. Circ Cardiovasc Imaging. 2017; 10(3): e004976.
  20. Kataoka Yu, Wolski K, Uno K, et al. Spotty calcification as a marker of accelerated progression of coronary atherosclerosis: insights from serial intravascular ultrasound. J Am Coll Cardiol. 2012; 59(18): 1592–1597.
  21. Kataoka Yu, Puri R, Hammadah M, et al. Spotty calcification and plaque vulnerability in vivo: frequency-domain optical coherence tomography analysis. Cardiovasc Diagn Ther. 2014; 4(6): 460–469.
  22. Sakaguchi M, Hasegawa T, Ehara S, et al. New insights into spotty calcification and plaque rupture in acute coronary syndrome: an optical coherence tomography study. Heart Vessels. 2016; 31(12): 1915–1922.
  23. Pu J, Zhang P, Guo J, et al. TCTAP A-165 Calcification Pattern and Plaque Vulnerability: Lessons from In-Vivo and In-Vitro Multimodality Intracoronary Imaging Studies. Journal of the American College of Cardiology. 2016; 67(16): S73.
  24. Bluestein D, Alemu Y, Avrahami I, et al. Influence of microcalcifications on vulnerable plaque mechanics using FSI modeling. J Biomech. 2008; 41(5): 1111–1118.
  25. Shi X, Gao J, Lv Q, et al. Calcification in Atherosclerotic Plaque Vulnerability: Friend or Foe? Front Physiol. 2020; 11: 56.
  26. Radcliff K, Tang TB, Lim J, et al. Insulin-like growth factor-I regulates proliferation and osteoblastic differentiation of calcifying vascular cells via extracellular signal-regulated protein kinase and phosphatidylinositol 3-kinase pathways. Circ Res. 2005; 96(4): 398–400.
  27. Komori T, Tanaka M, Senba E, et al. Lack of oncostatin M receptor β leads to adipose tissue inflammation and insulin resistance by switching macrophage phenotype. J Biol Chem. 2013; 288(30): 21861–21875.
  28. Kakutani Y, Shioi A, Shoji T, et al. Oncostatin M Promotes Osteoblastic Differentiation of Human Vascular Smooth Muscle Cells Through JAK3-STAT3 Pathway. J Cell Biochem. 2015; 116(7): 1325–1333.
  29. Joshi NV, Vesey A, Newby DE, et al. Will 18F-sodium fluoride PET-CT imaging be the magic bullet for identifying vulnerable coronary atherosclerotic plaques? Curr Cardiol Rep. 2014; 16(9): 521.
  30. Mintz GS, Popma JJ, Pichard AD, et al. Patterns of calcification in coronary artery disease. A statistical analysis of intravascular ultrasound and coronary angiography in 1155 lesions. Circulation. 1995; 91(7): 1959–1965.
  31. Nelson AJ, Raggi P, Wolf M, et al. Targeting Vascular Calcification in Chronic Kidney Disease. JACC Basic Transl Sci. 2020; 5(4): 398–412.
  32. Voelkl J, Lang F, Eckardt KU, et al. Signaling pathways involved in vascular smooth muscle cell calcification during hyperphosphatemia. Cell Mol Life Sci. 2019; 76(11): 2077–2091.
  33. Alam Mu, Kirton JP, Wilkinson FL, et al. Calcification is associated with loss of functional calcium-sensing receptor in vascular smooth muscle cells. Cardiovasc Res. 2009; 81(2): 260–268.
  34. Li Q, van de Wetering K, Uitto J. Pseudoxanthoma Elasticum as a Paradigm of Heritable Ectopic Mineralization Disorders: Pathomechanisms and Treatment Development. Am J Pathol. 2019; 189(2): 216–225.
  35. Ngai D, Lino M, Rothenberg KE, et al. DDR1 (Discoidin Domain Receptor-1)-RhoA (Ras Homolog Family Member A) Axis Senses Matrix Stiffness to Promote Vascular Calcification. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2020; 40(7): 1763–1776.
  36. Louvet L, Büchel J, Steppan S, et al. Magnesium prevents phosphate-induced calcification in human aortic vascular smooth muscle cells. Nephrol Dial Transplant. 2013; 28(4): 869–878.
  37. Glagov S, Weisenberg E, Zarins CK, et al. Compensatory enlargement of human atherosclerotic coronary arteries. N Engl J Med. 1987; 316(22): 1371–1375.
  38. Fok PW, Lanzer P. Media sclerosis drives and localizes atherosclerosis in peripheral arteries. PLoS One. 2018; 13(10): e0205599.
  39. Chatzizisis YS, Coskun AU, Jonas M, et al. Role of endothelial shear stress in the natural history of coronary atherosclerosis and vascular remodeling: molecular, cellular, and vascular behavior. J Am Coll Cardiol. 2007; 49(25): 2379–2393.
  40. Xu X, Ju H, Cai J, et al. High-resolution MR study of the relationship between superficial calcification and the stability of carotid atherosclerotic plaque. Int J Cardiovasc Imaging. 2010; 26 Suppl 1: 143–150.
  41. Li ZY, Howarth S, Tang T, et al. Does calcium deposition play a role in the stability of atheroma? Location may be the key. Cerebrovasc Dis. 2007; 24(5): 452–459.
  42. Gössl M, Versari D, Hildebrandt HA, et al. Segmental heterogeneity of vasa vasorum neovascularization in human coronary atherosclerosis. JACC Cardiovasc Imaging. 2010; 3(1): 32–40.