Wyszuk. zaawans.

Tom 3, Nr 3-4 (2023)
Wytyczne / stanowisko ekspertów
Opublikowany online: 2023-08-29
Dodaj do koszyka: 49,00 PLN
Pliki uzupełniające/dodatkowe
Wyświetlenia strony 89
Wyświetlenia/pobrania artykułu 2
Pobierz cytowanie

Eksport do Mediów Społecznościowych

Eksport do Mediów Społecznościowych

Standaryzacja wielokolorowej cytometrii przepływowej w diagnostyce ostrych białaczek limfoblastycznych u dzieci — wytyczne grupy AIEOP-BFM

Marta Kinga Surman1, Karolina Elżbieta Bukowska-Straková1
DOI: 10.5603/hemedu.95478
Hematologia - Edukacja 2023;3(3-4):104-117.

Streszczenie

Immunofenotypowanie za pomocą cytometrii przepływowej (FCM) jest obecnie jedną z podstawowych metod diagnostycznych w rozpoznawaniu ostrych białaczek. Jednakże wieloośrodkowe dane pokazują pewne braki i niespójności między obowiązującymi klasyfikacjami, standaryzacją technologiczną a ich wdrożeniem do praktyki klinicznej. Grupa Associazone Italiana Ematologia Oncologia Pediatrica-Berlin–Frankfurt–Münster, w skład której wchodziło 9 europejskich ośrodków referencyjnych w diagnostyce immunofenotypowej białaczek u dzieci, opracowała wytyczne mające na celu walidację i standaryzację samej metody oraz — co ważniejsze — wypracowała również wspólne wytyczne opisujące wdrożenie możliwości wielokolorowej FCM do praktyki klinicznej. Przedstawiono wymagania dotyczące panelu diagnostycznego, systemu bramkowania blastów, kontroli wewnętrznej, trójstopniowej oceny ekspresji antygenów, opisu heterogenności komórek blastycznych i tworzenia subklonów, dopracowano immunologiczny system klasyfikacji ostrych białaczek limfoblastycznych oraz algorytm postępowania w ocenie linii dominującej w przypadkach białaczek dwuliniowych lub ze złożonym immunofenotypem, co ma decydujące znaczenie w doborze odpowiedniego leczenia. Niniejsze wytyczne są ważnym krokiem w kierunku niezbędnej standaryzacji międzylaboratoryjnej diagnostyki immunofenotypowej białaczek u dzieci, stosunkowo łatwym do wdrożenia w laboratoriach diagnostycznych oraz ułatwiającym prowadzenie wieloośrodkowych badań klinicznych. Celem niniejszej pracy jest rozpowszechnienie w Polsce przedstawionych wytycznych. Umożliwi to sprawniejsze porównywanie wyników między ośrodkami oraz ułatwi ich interpretację przez lekarzy klinicystów w sytuacjach wieloośrodkowej opieki nad pacjentem, na przykład w jednostkach diagnostycznej, leczniczej i transplantacyjnej.

Słowa kluczowe: standaryzacjacytometria przepływowaimmunofenotypowanieostra białaczka limfoblastyczna u dzieci

Artykuł dostępny w formacie PDF

Dodaj do koszyka: 49,00 PLN

Posiadasz dostęp do tego artykułu?

Referencje

  1. Dworzak MN, Buldini B, Gaipa G, et al. International-BFM-FLOW-network. AIEOP-BFM consensus guidelines 2016 for flow cytometric immunophenotyping of Pediatric acute lymphoblastic leukemia. Cytometry B Clin Cytom. 2018; 94(1): 82–93.
    CrossRefPubMed
  2. Khoury JD, Solary E, Abla O, et al. The 5th edition of the World Health Organization Classification of Haematolymphoid Tumours: Myeloid and Histiocytic/Dendritic Neoplasms. Leukemia. 2022; 36(7): 1703–1719.
    CrossRefPubMed
  3. Alaggio R, Amador C, Anagnostopoulos I, et al. International Agency for Research on Cancer/World Health Organization. Correction: "The 5th edition of The World Health Organization classification of haematolymphoid tumours: lymphoid neoplasms" Leukemia. 2022 Jul;36(7):1720-1748. Leukemia. 2023; 37(9): 1944–1951.
    CrossRefPubMed
  4. Basso G, Buldini B, De Zen L, et al. New methodologic approaches for immunophenotyping acute leukemias. Haematologica. 2001; 86(7): 675–692.
    PubMed
  5. Wood BL, Arroz M, Barnett D, et al. 2006 Bethesda International Consensus recommendations on the immunophenotypic analysis of hematolymphoid neoplasia by flow cytometry: optimal reagents and reporting for the flow cytometric diagnosis of hematopoietic neoplasia. Cytometry B Clin Cytom. 2007; 72(Suppl 1): S14–S22.
    CrossRefPubMed
  6. Vardiman JW, Thiele J, Arber DA, et al. The 2008 revision of the World Health Organization (WHO) classification of myeloid neoplasms and acute leukemia: rationale and important changes. Blood. 2009; 114(5): 937–951.
    CrossRefPubMed
  7. Arber DA, Orazi A, Hasserjian R, et al. The 2016 revision to the World Health Organization classification of myeloid neoplasms and acute leukemia. Blood. 2016; 127(20): 2391–2405.
    CrossRefPubMed
  8. Béné MC, Nebe T, Bettelheim P, et al. Immunophenotyping of acute leukemia and lymphoproliferative disorders: a consensus proposal of the European LeukemiaNet Work Package 10. Leukemia. 2011; 25(4): 567–574.
    CrossRefPubMed
  9. van Dongen JJM, Lhermitte L, Böttcher S, et al. EuroFlow Consortium (EU-FP6, LSHB-CT-2006-018708). EuroFlow antibody panels for standardized n-dimensional flow cytometric immunophenotyping of normal, reactive and malignant leukocytes. Leukemia. 2012; 26(9): 1908–1975.
    CrossRefPubMed
  10. Kalina T, Flores-Montero J, van der Velden VHJ, et al. EuroFlow Consortium (EU-FP6, LSHB-CT-2006-018708). EuroFlow standardization of flow cytometer instrument settings and immunophenotyping protocols. Leukemia. 2012; 26(9): 1986–2010.
    CrossRefPubMed
  11. van der Does-van den Berg A, Bartram CR, Basso G, et al. Minimal requirements for the diagnosis, classification, and evaluation of the treatment of childhood acute lymphoblastic leukemia (ALL) in the "BFM Family" Cooperative Group. Med Pediatr Oncol. 1992; 20(6): 497–505.
    CrossRefPubMed
  12. Béné MC, Castoldi G, Knapp W, et al. Proposals for the immunological classification of acute leukemias. European Group for the Immunological Characterization of Leukemias (EGIL). Leukemia. 1995; 9(10): 1783–1786.
    PubMed
  13. Béné MC, Bernier M, Casasnovas RO, et al. The reliability and specificity of c-kit for the diagnosis of acute myeloid leukemias and undifferentiated leukemias. Blood. 1998; 92(2): 596–599.
    CrossRef
  14. Ratei R, Karawajew L, Lacombe F, et al. European Working Group of Clinical Cell Analysis (EWGCCA). Normal lymphocytes from leukemic samples as an internal quality control for fluorescence intensity in immunophenotyping of acute leukemias. Cytometry B Clin Cytom. 2006; 70(1): 1–9.
    CrossRefPubMed
  15. Coustan-Smith E, Mullighan CG, Onciu M, et al. Early T-cell precursor leukaemia: a subtype of very high-risk acute lymphoblastic leukaemia. Lancet Oncol. 2009; 10(2): 147–156.
    CrossRefPubMed
  16. Attarbaschi A, Mann G, König M, et al. Mixed lineage leukemia-rearranged childhood pro-B and CD10-negative pre-B acute lymphoblastic leukemia constitute a distinct clinical entity. Clin Cancer Res. 2006; 12(10): 2988–2994.
    CrossRefPubMed
  17. Mullighan CG, Collins-Underwood JR, Phillips LAA, et al. Rearrangement of CRLF2 in B-progenitor- and Down syndrome-associated acute lymphoblastic leukemia. Nat Genet. 2009; 41(11): 1243–1246.
    CrossRefPubMed
  18. Zangrando A, Intini F, te Kronnie G, et al. Validation of NG2 antigen in identifying BP-ALL patients with MLL rearrangements using qualitative and quantitative flow cytometry: a prospective study. Leukemia. 2008; 22(4): 858–861.
    CrossRefPubMed
  19. Borowitz MJ, Bene M-C, Harris NL, Porwit A, Matutes E. Acute leukaemias of ambiguous lineage. In: Swerdlow S, Campo E, Harris NL. et al. ed. WHO classification of tumours of haematopoietic and lymphoid tissues. IARC, Lyon 2008: 149–155.
  20. Rubnitz JE, Onciu M, Pounds S, et al. Acute mixed lineage leukemia in children: the experience of St Jude Children's Research Hospital. Blood. 2009; 113(21): 5083–5089.
    CrossRefPubMed
  21. Al-Seraihy AS, Owaidah TM, Ayas M, et al. Clinical characteristics and outcome of children with biphenotypic acute leukemia. Haematologica. 2009; 94(12): 1682–1690.
    CrossRefPubMed
  22. Gerr H, Zimmermann M, Schrappe M, et al. Acute leukaemias of ambiguous lineage in children: characterization, prognosis and therapy recommendations. Br J Haematol. 2010; 149(1): 84–92.
    CrossRefPubMed
  23. Mejstrikova E, Volejnikova J, Fronkova E, et al. Prognosis of children with mixed phenotype acute leukemia treated on the basis of consistent immunophenotypic criteria. Haematologica. 2010; 95(6): 928–935.
    CrossRefPubMed
  24. Steiner M, Attarbaschi A, Dworzak M, et al. Austrian Berlin-Frankfurt-Münster Study Group. Cytochemically myeloperoxidase positive childhood acute leukemia with lymphoblastic morphology treated as lymphoblastic leukemia. J Pediatr Hematol Oncol. 2010; 32(1): e4–e7.
    CrossRefPubMed
  25. Matutes E, Pickl WF, Van't Veer M, et al. Mixed-phenotype acute leukemia: clinical and laboratory features and outcome in 100 patients defined according to the WHO 2008 classification. Blood. 2011; 117(11): 3163–3171.
    CrossRefPubMed
  26. Weinberg OK, Arber DA. Mixed-phenotype acute leukemia: historical overview and a new definition. Leukemia. 2010; 24(11): 1844–1851.
    CrossRefPubMed
  27. Borowitz MJ, Borowitz MJ. Mixed phenotype acute leukemia. Cytometry B Clin Cytom. 2013 [Epub ahead of print]; 86(3): 152–153.
    CrossRefPubMed
  28. Inukai T, Kiyokawa N, Campana D, et al. Clinical significance of early T-cell precursor acute lymphoblastic leukaemia: results of the Tokyo Children's Cancer Study Group Study L99-15. Br J Haematol. 2012; 156(3): 358–365.
    CrossRefPubMed
  29. Zhang J, Ding Li, Holmfeldt L, et al. The genetic basis of early T-cell precursor acute lymphoblastic leukaemia. Nature. 2012; 481(7380): 157–163.
    CrossRefPubMed
  30. Dworzak MN, Gaipa G, Ratei R, et al. Standardization of flow cytometric minimal residual disease evaluation in acute lymphoblastic leukemia: Multicentric assessment is feasible. Cytometry B Clin Cytom. 2008; 74(6): 331–340.
    CrossRefPubMed
  31. Karawajew L, Dworzak M, Ratei R, et al. Minimal residual disease analysis by eight-color flow cytometry in relapsed childhood acute lymphoblastic leukemia. Haematologica. 2015; 100(7): 935–944.
    CrossRefPubMed
  32. Veltroni M, De Zen L, Sanzari MC, et al. I-BFM-ALL-FCM-MRD-Study Group. Expression of CD58 in normal, regenerating and leukemic bone marrow B cells: implications for the detection of minimal residual disease in acute lymphocytic leukemia. Haematologica. 2003; 88(11): 1245–1252.
    PubMed
  33. Mazumder S, Manivannan P, Bhandary C, et al. Proposed single-tube ten-color antibody panel to optimize resources for measurable residual disease detection in b-acute lymphoblastic leukemia based on leukemia associated immunophenotype evaluation at diagnosis: a single center experience from southern india. J Leuk. 2022; 10: 308.
    CrossRef
  34. Płotka A, Lewandowski K. BCR/ABL1-Like acute lymphoblastic leukemia: from diagnostic approaches to molecularly targeted therapy. Acta Haematol. 2022; 145(2): 122–131.
    CrossRefPubMed
  35. Djokic M, Björklund E, Blennow E, et al. Overexpression of CD123 correlates with the hyperdiploid genotype in acute lymphoblastic leukemia. Haematologica. 2009; 94(7): 1016–1019.
    CrossRefPubMed
  36. Kalina T, Vaskova M, Mejstrikova E, et al. Myeloid antigens in childhood lymphoblastic leukemia: clinical data point to regulation of CD66c distinct from other myeloid antigens. BMC Cancer. 2005; 5: 38.
    CrossRefPubMed
  37. Hrusák O, Porwit-MacDonald A. Antigen expression patterns reflecting genotype of acute leukemias. Leukemia. 2002; 16(7): 1233–1258.
    CrossRefPubMed
  38. De Zen L, Orfao A, Cazzaniga G, et al. Quantitative multiparametric immunophenotyping in acute lymphoblastic leukemia: correlation with specific genotype. I. ETV6/AML1 ALLs identification. Leukemia. 2000; 14(7): 1225–1231.
    CrossRefPubMed
  39. Bugarin C, Sarno J, Palmi C, et al. I-BFM study group. Fine tuning of surface CRLF2 expression and its associated signaling profile in childhood B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia. Haematologica. 2015; 100(6): e229–e232.
    CrossRefPubMed
  40. Morak M, Attarbaschi A, Fischer S, et al. Small sizes and indolent evolutionary dynamics challenge the potential role of P2RY8-CRLF2-harboring clones as main relapse-driving force in childhood ALL. Blood. 2012; 120(26): 5134–5142.
    CrossRefPubMed
  41. Attarbaschi A, Morak M, Cario G, et al. Associazione Italiana di Ematologia ed Oncologia Pediatrica (AIEOP)-Berlin-Frankfurt-Münster (BFM) Study Group and National Cancer Research Institute (NCRI)-Children's Cancer and Leukaemia (CCLG) Study Group. Treatment outcome of CRLF2-rearranged childhood acute lymphoblastic leukaemia: a comparative analysis of the AIEOP-BFM and UK NCRI-CCLG study groups. Br J Haematol. 2012; 158(6): 772–777.
    CrossRefPubMed
  42. Vaskova M, Mejstrikova E, Kalina T, et al. Transfer of genomics information to flow cytometry: expression of CD27 and CD44 discriminates subtypes of acute lymphoblastic leukemia. Leukemia. 2005; 19(5): 876–878.
    CrossRefPubMed
  43. Attarbaschi A, Mann G, Schumich A, et al. CD44 deficiency is a consistent finding in childhood Burkitt's lymphoma and leukemia. Leukemia. 2007; 21(5): 1110–1113.
    CrossRefPubMed
  44. Schinnerl D, Mejstrikova E, Schumich A, et al. CD371 cell surface expression: a unique feature of -rearranged acute lymphoblastic leukemia. Haematologica. 2019; 104(8): e352–e355.
    CrossRefPubMed
  45. Slamova L, Starkova J, Fronkova E, et al. CD2-positive B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia with an early switch to the monocytic lineage. Leukemia. 2014; 28(3): 609–620.
    CrossRefPubMed
  46. Lanza F, Latorraca A, Moretti S, et al. Comparative analysis of different permeabilization methods for the flow cytometry measurement of cytoplasmic myeloperoxidase and lysozyme in normal and leukemic cells. Cytometry. 1997; 30(3): 134–144.
    PubMed
  47. Kappelmayer J, Gratama JW, Karászi E, et al. Flow cytometric detection of intracellular myeloperoxidase, CD3 and CD79a. Interaction between monoclonal antibody clones, fluorochromes and sample preparation protocols. J Immunol Methods. 2000; 242(1-2): 53–65.
    CrossRefPubMed
  48. Wood B, Jevremovic D, Béné MC, et al. ICSH/ICCS Working Group. Validation of cell-based fluorescence assays: practice guidelines from the ICSH and ICCS - part V - assay performance criteria. Cytometry B Clin Cytom. 2013; 84(5): 315–323.
    CrossRefPubMed
  49. Johansson U, Bloxham D, Couzens S, et al. British Committee for Standards in Haematology. Guidelines on the use of multicolour flow cytometry in the diagnosis of haematological neoplasms. British Committee for Standards in Haematology. Br J Haematol. 2014; 165(4): 455–488.
    CrossRefPubMed
  50. Owens MA, Vall HG, Hurley AA, et al. Validation and quality control of immunophenotyping in clinical flow cytometry. J Immunol Methods. 2000; 243(1-2): 33–50.
    CrossRefPubMed
  51. Arnoulet C, Béné MC, Durrieu F, et al. Four- and five-color flow cytometry analysis of leukocyte differentiation pathways in normal bone marrow: a reference document based on a systematic approach by the GTLLF and GEIL. Cytometry B Clin Cytom. 2010; 78(1): 4–10.
    CrossRefPubMed
  52. Mahnke YD, Roederer M. Optimizing a multicolor immunophenotyping assay. Clin Lab Med. 2007; 27(3): 469–85, v.
    CrossRefPubMed
  53. Hulspas R, O'Gorman MRG, Wood BL, et al. Considerations for the control of background fluorescence in clinical flow cytometry. Cytometry B Clin Cytom. 2009; 76(6): 355–364.
    CrossRefPubMed
  54. Tangri S, Vall H, Kaplan D, et al. ICSH/ICCS Working Group. Validation of cell-based fluorescence assays: practice guidelines from the ICSH and ICCS — part III — analytical issues. Cytometry B Clin Cytom. 2013; 84(5): 291–308.
    CrossRefPubMed
  55. Del Vecchio L, Brando B, Lanza F, et al. Italian Society for Cytometry. Recommended reporting format for flow cytometry diagnosis of acute leukemia. Haematologica. 2004; 89(5): 594–598.
    PubMed
  56. Gratama JW, D'hautcourt JL, Mandy F, et al. Flow cytometric quantitation of immunofluorescence intensity: Problems and perspectives. Cytometry. 1998; 33(2): 166–178, doi: 10.1002/(sici)1097-0320(19981001)33:2<166::aid-cyto11>3.0.co;2-s.
  57. Lenkei R, Gratama JW, Rothe G, et al. Performance of calibration standards for antigen quantitation with flow cytometry. Cytometry. 1998; 33(2): 188–196, doi: 10.1002/(sici)1097-0320(19981001)33:2<188::aid-cyto13>3.0.co;2-q.
    PubMed
  58. Hrušák O, Basso G, Ratei R, et al. AIEOP-BFM Flow Network. Flow diagnostics essential code: a simple and brief format for the summary of leukemia phenotyping. Cytometry B Clin Cytom. 2014; 86(4): 288–291.
    CrossRefPubMed
  59. Ratei R, Schabath R, Karawajew L, et al. Lineage classification of childhood acute lymphoblastic leukemia according to the EGIL recommendations: results of the ALL-BFM 2000 trial. Klin Padiatr. 2013; 225(Suppl 1): S34–S39.
    CrossRefPubMed
  60. Kansal R, Deeb G, Barcos M, et al. Precursor B lymphoblastic leukemia with surface light chain immunoglobulin restriction: a report of 15 patients. Am J Clin Pathol. 2004; 121(4): 512–525.
    CrossRefPubMed
  61. Li S, Lew G. Is B-lineage acute lymphoblastic leukemia with a mature phenotype and l1 morphology a precursor B-lymphoblastic leukemia/lymphoma or Burkitt leukemia/lymphoma? Arch Pathol Lab Med. 2003; 127(10): 1340–1344.
    CrossRefPubMed
  62. Tsao L, Draoua HY, Osunkwo I, et al. Mature B-cell acute lymphoblastic leukemia with t(9;11) translocation: a distinct subset of B-cell acute lymphoblastic leukemia. Mod Pathol. 2004; 17(7): 832–839.
    CrossRefPubMed
  63. Blin N, Méchinaud F, Talmant P, et al. Mature B-cell lymphoblastic leukemia with MLL rearrangement: an uncommon and distinct subset of childhood acute leukemia. Leukemia. 2008; 22(5): 1056–1059.
    CrossRefPubMed
  64. Dworzak MN, Fritsch G, Buchinger P, et al. Flow cytometric assessment of human MIC2 expression in bone marrow, thymus, and peripheral blood. Blood. 1994; 83(2): 415–425.
    PubMed
  65. Zuurbier L, Gutierrez A, Mullighan CG, et al. Immature MEF2C-dysregulated T-cell leukemia patients have an early T-cell precursor acute lymphoblastic leukemia gene signature and typically have non-rearranged T-cell receptors. Haematologica. 2014; 99(1): 94–102.
    CrossRefPubMed
  66. Ratei R, Karawajew L, Lacombe F, et al. European Working Group of Clinical Cell Analysis. Discriminant function analysis as decision support system for the diagnosis of acute leukemia with a minimal four color screening panel and multiparameter flow cytometry immunophenotyping. Leukemia. 2007; 21(6): 1204–1211.
    CrossRefPubMed

Informacje o plikach cookie

Niezbędne pliki cookie

Zawsze aktywne

Te pliki cookie są niezbędne do prawidłowego wyświetlania i działania strony internetowej. Zablokowanie ich może spowodować nieprawidłowe działanie strony.

Analityczne pliki cookie

W ramach naszej strony internetowej korzystamy z narzędzi analitycznych, takich jak Google Analytics, które umożliwiają nam weryfikację ruchu na stronie internetowej. Narzędzia te mogą wymagać użycia plików cookie.

Społecznościowe pliki cookie

Są to pliki cookie powiązane z portalami społecznościowymi, z których korzystamy. Zaakceptowanie ich pozwoli na powiązanie Twojej wizyty na stronie z naszymi profilami w mediach społecznościowych.

Marketingowe pliki cookie

Są to pliki cookie odpowiedzialne za prowadzenie działań reklamowych i marketingowych - zgoda na ich wykorzystanie pozwoli nam kierować do Ciebie reklamy, bazujące na podstawie Twoich wcześniejszych aktywności w ramach naszej stronie internetowej.

Hematologia - Edukacja

O Via Medica Reklama
Księgarnia (Ikamed) TVMed
Aktualności
Copyright © 2023 Via Medica Regulations Cookie policy Privacy policy Legal Notice