Tom 11, Nr 2 (2018)
Artykuł przeglądowy
Opublikowany online: 2018-09-07
Wyświetlenia strony
849
Wyświetlenia/pobrania artykułu
4167
Metody inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych w koncentracie krwinek czerwonych i krwi pełnej
Journal of Transfusion Medicine 2018;11(2):63-71.
Streszczenie
Począwszy od końca lat 90. ubiegłego stulecia metody inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych w składnikach krwi przeznaczonych do przetoczenia zaczęto wdrażać do rutynowej pracy placówek służby krwi w wielu krajach. Obecnie rutynowo są stosowane trzy metody inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych w składnikach krwi: system Theraflex MB-Plasma (dla osocza) z zastosowaniem błękitu metylenowego, system Intercept [dla osocza i koncentratu krwinek płytkowych (KKP)] z zastosowaniem chlorowodorku amotosalenu oraz system Mirasol (dla osocza i KKP), w którym wykorzystano ryboflawinę.
Dotychczas opracowano kilka metod inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych w koncentracie krwinek czerwonych (KKCz) oraz metodę inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych w krwi pełnej. Jednakże ze względu na niezakończone badania kliniczne żadna z nich nie została wdrożona do rutynowego stosowania. Celem niniejszej pracy jest przedstawienie aktualnego stanu wiedzy dotyczącej inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych w krwi pełnej i KKCz.
Słowa kluczowe: inaktywacja czynników chorobotwórczychkoncentrat krwinek czerwonychkrew pełna
Referencje
- Hellstern P, Sachse H, Schwinn H, et al. Manufacture and in vitro characterization of a solvent/detergent-treated human plasma. Vox Sang. 1992; 63(3): 178–185.
- Mohr H, Lambrecht B, Selz A. Photodynamic virus inactivation of blood components. Immunol Invest. 1995; 24(1-2): 73–85.
- Prowse CV. Component pathogen inactivation: a critical review. Vox Sang. 2013; 104(3): 183–199.
- Schlenke P. Pathogen inactivation technologies for cellular blood components: an update. Transfus Med Hemother. 2014; 41(4): 309–325.
- Heiden M, Seitz R. Pathogen inactivation - regulators aspects. ISBT Science Series. 2010; 5(n1): 279–281.
- North J, Neyndorff H, Levy JG. Photosensitizers as virucidal agents. J Photochem Photobiol B. 1993; 17(2): 99–108.
- Cazenave JP, Naegelen C, Isola H, et al. Council of Europe Expert Committee in Blood Transfusion Study Group on Pathogen Inactivation of Labile Blood Components. Pathogen inactivation of labile blood products. Transfus Med. 2001; 11(3): 149–175.
- Ben-Hur E, Rywkin S, Rosenthal I, et al. Virus inactivation in red cell concentrates by photosensitization with phthalocyanines: protection of red cells but not of vesicular stomatitis virus with a water-soluble analogue of vitamin E. Transfusion. 1995; 35: 401–406.
- O'Brien JM, Gaffney DK, Wang TP, et al. Merocyanine 540-sensitized photoinactivation of enveloped viruses in blood products: site and mechanism of phototoxicity. Blood. 1992; 80(1): 277–285.
- Purmal A, Valeri CR, Dzik W, et al. Process for the preparation of pathogen-inactivated RBC concentrates by using PEN110 chemistry: preclinical studies. Transfusion. 2002; 42(2): 139–145.
- Henschler R, Seifried E, Mufti N. Development of the S-303 Pathogen Inactivation Technology for Red Blood Cell Concentrates. Transfus Med Hemother. 2011; 38(1): 33–42.
- Mather T, Takeda T, Tassello J, et al. West Nile virus in blood: stability, distribution, and susceptibility to PEN110 inactivation. Transfusion. 2003; 43(8): 1029–1037.
- AuBuchon JP, Pickard CA, Herschel LH, et al. Production of pathogen-inactivated RBC concentrates using PEN110 chemistry: a Phase I clinical study. Transfusion. 2002; 42(2): 146–152.
- Chapman JR, Moore K, Butterworth BE. Pathogen inactivation of RBCs: PEN110 reproductive toxicology studies. Transfusion. 2003; 43(10): 1386–1393.
- Conlan MG, Lin L-S, Stassinopoulos A. Investigation of immunoreactivity observed after transfusion of S-303 RBCs in 2 phase III clinical trials in support of acute or chronic anemia. Transfusion 2005, 45 (3suppl), 29A.
- North AK, Castro G, Erickson A, et al. Characterization of antibodies to red cells prepared with S-303 pathogen inactivation treatment. Vox Sang. 2007; 93(suppl 1): 167–168.
- Winter KM, Johnson L, Kwok M, et al. Red blood cell in vitro quality and function is maintained after S-303 pathogen inactivation treatment. Transfusion. 2014; 54(7): 1798–1807.
- Henschler R, Janetzko K, Erterek B, et al. Characterization of red cell concentrates treated with the S-303 pathogen inactivation system and stored in saline adenine glucose-mannitol (SAGM) Vox Sang. 2010; 99(suppl 1): 38.
- Cancelas JA, Rugg N, Dumont LJ, et al. Comprehensive evaluation of a new process for S-303 pathogen-inactivation of red blood cells. Transfusion. 2010; 50(suppl): 9A.
- Cancelas JA, Dumont LJ, Rugg N, et al. Stored red blood cell viability is maintained after treatment with a second-generation S-303 pathogen inactivation process. Transfusion. 2011; 51(11): 2367–76.
- Mundt JM, Rouse L, Van den Bossche J, et al. Chemical and biological mechanisms of pathogen reduction technologies. Photochem Photobiol. 2014; 90(5): 957–964.
- Marschner S, Goodrich R. Pathogen Reduction Technology Treatment of Platelets, Plasma and Whole Blood Using Riboflavin and UV Light. Transfusion Medicine and Hemotherapy. 2011; 38(1): 8–18.
- Reddy H, Marschner S, Doane S, et al. Room temperature storage of whole blood treated with the Mirasol System. Vox Sang. 2010; 99: p243.
- Reddy H, Doane S, Spotts C, et al. In vitro assessments of platelet function in whole blood treated with the Mirasol System and stored at room temperature. Vox Sang. 2010, 99, p 243.
- Cancelas J, Rugg N, Worsham DN, et al. Quality assessment of stored RBC after treatment of whole blood with the Mirasol System. Transfusion. 2010; 50(suppl): p71A.
- Allain JP, Owusu-Ofori A, Assennato S, et al. Effect of Plasmodium inactivation in whole blood on the incidence of blood transfusion-transmitted malaria in endemic regions: the African Investigation of the Mirasol System (AIMS) randomised controlled trial. The Lancet. 2016; 387(10029): 1753–1761.
- Schubert P, Culibrk B, Karwal S, et al. Whole blood treated with riboflavin and ultraviolet light: quality assessment of all blood components produced by the buffy coat method. Transfusion. 2014; 55(4): 815–823.
- Kumukova I, Trakhtman P, Starostin N, et al. Comparison of laboratory parameters of pathogen reduced and irradiated RBC suspension. Vox Sang. 2018; 113 (1): 5-347. (p.169).
- Allain JP, Goodrich R. Pathogen reduction of whole blood: utility and feasibility. Transfus Med. 2017; 27 Suppl 5: 320–326.
