open access

Vol 11, No 2 (2018)
Review paper
Published online: 2018-09-07
Get Citation

Metody inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych w koncentracie krwinek czerwonych i krwi pełnej

Elżbieta Lachert, Jolanta Kubis, Jolanta Antoniewicz-Papis, Michał Bubiński, Magdalena Łętowska
Journal of Transfusion Medicine 2018;11(2):63-71.

open access

Vol 11, No 2 (2018)
REVIEWS
Published online: 2018-09-07

Abstract

Począwszy od końca lat 90. ubiegłego stulecia metody inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych (na potrzeby niniejszego artykułu będzie stosowany skrót — metody inaktywacji) w składnikach krwi przeznaczonych do przetoczenia zaczęto wdrażać do rutynowej pracy placówek służby krwi w wielu krajach. Na podstawie doświadczeń zdobytych podczas opracowywania metod inaktywacji czynników zakaźnych w procesie frakcjonowania osocza, skoncentrowano się na opracowaniu metod inaktywacji w osoczu przeznaczonym do celów klinicznych.

Abstract

Począwszy od końca lat 90. ubiegłego stulecia metody inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych (na potrzeby niniejszego artykułu będzie stosowany skrót — metody inaktywacji) w składnikach krwi przeznaczonych do przetoczenia zaczęto wdrażać do rutynowej pracy placówek służby krwi w wielu krajach. Na podstawie doświadczeń zdobytych podczas opracowywania metod inaktywacji czynników zakaźnych w procesie frakcjonowania osocza, skoncentrowano się na opracowaniu metod inaktywacji w osoczu przeznaczonym do celów klinicznych.
Get Citation

Keywords

metoda; biologiczne czynniki chorobotwórcze

About this article
Title

Metody inaktywacji biologicznych czynników chorobotwórczych w koncentracie krwinek czerwonych i krwi pełnej

Journal

Journal of Transfusion Medicine

Issue

Vol 11, No 2 (2018)

Article type

Review paper

Pages

63-71

Published online

2018-09-07

Bibliographic record

Journal of Transfusion Medicine 2018;11(2):63-71.

Keywords

metoda
biologiczne czynniki chorobotwórcze

Authors

Elżbieta Lachert
Jolanta Kubis
Jolanta Antoniewicz-Papis
Michał Bubiński
Magdalena Łętowska

References (29)
  1. Hellstern P, Sachse H, Schwinn H, et al. Manufacture and in vitro characterization of a solvent/detergent-treated human plasma. Vox Sang. 1992; 63(3): 178–185.
  2. Mohr H, Lambrecht B, Selz A. Photodynamic virus inactivation of blood components. Immunol Invest. 1995; 24(1-2): 73–85.
  3. Prowse CV. Component pathogen inactivation: a critical review. Vox Sang. 2013; 104(3): 183–199.
  4. Schlenke P. Pathogen inactivation technologies for cellular blood components: an update. Transfus Med Hemother. 2014; 41(4): 309–325.
  5. Heiden M, Seitz R. Pathogen inactivation - regulators aspects. ISBT Science Series. 2010; 5(n1): 279–281.
  6. North J, Neyndorff H, Levy JG. Photosensitizers as virucidal agents. J Photochem Photobiol B. 1993; 17(2): 99–108.
  7. Cazenave JP, Naegelen C, Isola H, et al. Council of Europe Expert Committee in Blood Transfusion Study Group on Pathogen Inactivation of Labile Blood Components. Pathogen inactivation of labile blood products. Transfus Med. 2001; 11(3): 149–175.
  8. Ben-Hur E, Rywkin S, Rosenthal I, et al. Virus inactivation in red cell concentrates by photosensitization with phthalocyanines: protection of red cells but not of vesicular stomatitis virus with a water-soluble analogue of vitamin E. Transfusion. 1995; 35: 401–406.
  9. O'Brien JM, Gaffney DK, Wang TP, et al. Merocyanine 540-sensitized photoinactivation of enveloped viruses in blood products: site and mechanism of phototoxicity. Blood. 1992; 80(1): 277–285.
  10. Purmal A, Valeri CR, Dzik W, et al. Process for the preparation of pathogen-inactivated RBC concentrates by using PEN110 chemistry: preclinical studies. Transfusion. 2002; 42(2): 139–145.
  11. Henschler R, Seifried E, Mufti N. Development of the S-303 Pathogen Inactivation Technology for Red Blood Cell Concentrates. Transfus Med Hemother. 2011; 38(1): 33–42.
  12. Mather T, Takeda T, Tassello J, et al. West Nile virus in blood: stability, distribution, and susceptibility to PEN110 inactivation. Transfusion. 2003; 43(8): 1029–1037.
  13. AuBuchon JP, Pickard CA, Herschel LH, et al. Production of pathogen-inactivated RBC concentrates using PEN110 chemistry: a Phase I clinical study. Transfusion. 2002; 42(2): 146–152.
  14. Chapman JR, Moore K, Butterworth BE. Pathogen inactivation of RBCs: PEN110 reproductive toxicology studies. Transfusion. 2003; 43(10): 1386–1393.
  15. Conlan MG, Lin L-S, Stassinopoulos A. Investigation of immunoreactivity observed after transfusion of S-303 RBCs in 2 phase III clinical trials in support of acute or chronic anemia. Transfusion 2005, 45 (3suppl), 29A.
  16. North AK, Castro G, Erickson A, et al. Characterization of antibodies to red cells prepared with S-303 pathogen inactivation treatment. Vox Sang. 2007; 93(suppl 1): 167–168.
  17. Winter KM, Johnson L, Kwok M, et al. Red blood cell in vitro quality and function is maintained after S-303 pathogen inactivation treatment. Transfusion. 2014; 54(7): 1798–1807.
  18. Henschler R, Janetzko K, Erterek B, et al. Characterization of red cell concentrates treated with the S-303 pathogen inactivation system and stored in saline adenine glucose-mannitol (SAGM) Vox Sang. 2010; 99(suppl 1): 38.
  19. Cancelas JA, Rugg N, Dumont LJ, et al. Comprehensive evaluation of a new process for S-303 pathogen-inactivation of red blood cells. Transfusion. 2010; 50(suppl): 9A.
  20. Cancelas JA, Dumont LJ, Rugg N, et al. Stored red blood cell viability is maintained after treatment with a second-generation S-303 pathogen inactivation process. Transfusion. 2011; 51(11): 2367–76.
  21. Mundt JM, Rouse L, Van den Bossche J, et al. Chemical and biological mechanisms of pathogen reduction technologies. Photochem Photobiol. 2014; 90(5): 957–964.
  22. Marschner S, Goodrich R. Pathogen Reduction Technology Treatment of Platelets, Plasma and Whole Blood Using Riboflavin and UV Light. Transfusion Medicine and Hemotherapy. 2011; 38(1): 8–18.
  23. Reddy H, Marschner S, Doane S, et al. Room temperature storage of whole blood treated with the Mirasol System. Vox Sang. 2010; 99: p243.
  24. Reddy H, Doane S, Spotts C, et al. In vitro assessments of platelet function in whole blood treated with the Mirasol System and stored at room temperature. Vox Sang. 2010, 99, p 243.
  25. Cancelas J, Rugg N, Worsham DN, et al. Quality assessment of stored RBC after treatment of whole blood with the Mirasol System. Transfusion. 2010; 50(suppl): p71A.
  26. Allain JP, Owusu-Ofori A, Assennato S, et al. Effect of Plasmodium inactivation in whole blood on the incidence of blood transfusion-transmitted malaria in endemic regions: the African Investigation of the Mirasol System (AIMS) randomised controlled trial. The Lancet. 2016; 387(10029): 1753–1761.
  27. Schubert P, Culibrk B, Karwal S, et al. Whole blood treated with riboflavin and ultraviolet light: quality assessment of all blood components produced by the buffy coat method. Transfusion. 2014; 55(4): 815–823.
  28. Kumukova I, Trakhtman P, Starostin N, et al. Comparison of laboratory parameters of pathogen reduced and irradiated RBC suspension. Vox Sang. 2018; 113 (1): 5-347. (p.169).
  29. Allain JP, Goodrich R. Pathogen reduction of whole blood: utility and feasibility. Transfus Med. 2017; 27 Suppl 5: 320–326.

Important: This website uses cookies. More >>

The cookies allow us to identify your computer and find out details about your last visit. They remembering whether you've visited the site before, so that you remain logged in - or to help us work out how many new website visitors we get each month. Most internet browsers accept cookies automatically, but you can change the settings of your browser to erase cookies or prevent automatic acceptance if you prefer.

Czasopismo Journal of Transfusion Medicine dostęne jest również w Ikamed - księgarnia medyczna

Wydawcą serwisu jest Via Medica sp. z o.o. sp. komandytowa, ul. Świętokrzyska 73, 80–180 Gdańsk

tel.:+48 58 320 94 94, faks:+48 58 320 94 60, e-mail: viamedica@viamedica.pl