English Polski
Tom 2, Nr 1 (2009)
Praca badawcza (oryginalna)
Opublikowany online: 2009-02-12

dostęp otwarty

Wyświetlenia strony 1027
Wyświetlenia/pobrania artykułu 1849
Pobierz cytowanie

Eksport do Mediów Społecznościowych

Eksport do Mediów Społecznościowych

Wykrywanie RNA HCV i RNA HIV metodą Procleix HIV-1/HCV u dawców krwi z różnymi wynikami immunoenzymatycznych badań przeglądowych anty-HCV i anty-HIV

Piotr Grabarczyk, Joanna Medyńska, Grzegorz Liszewski, Dorota Kubicka-Russel, Ewa Sulkowska, Maria Mikulska, Magdalena Łętowska, Ewa Brojer
Journal of Transfusion Medicine 2009;2(1):26-33.

Streszczenie

Wstęp: Celem pracy była ocena czułości wykrywania RNA HIV i RNA HCV metodą Procleix HIV1/HCV oraz analiza częstości wykrywania materiału genetycznego wirusów u dawców z różnymi wynikami testów przeglądowych anty-HCV i anty-HIV.
Materiał i metody:Dziewięćdziesięciopięcioprocentowa czułość testu Procleix wynosiła 6,2 IU RNA HCV /ml i 44,5 IU RNA HIV /ml. RNA HCV wykryto w 71/392 (18,1%) dodatnich próbkach anty-HCV, zaś RNA HIV w 21/557 (3,8%) próbkach reaktywnych w badaniu EIA HIV. Częstość wykrywania RNA HCV korelowała z wartością S/C uzyskaną w badaniach immunoenzymatycznych. RNA HCV wykryto u 68/105 (64,8%) dawców z S/C > 4, u 1/85 (1,2%) z S/C od 2,00 do 3,99 i u 2/202 dawców (1%) z S/C od 1,00 do 1,99. RNA HIV wykryto u wszystkich 21 dawców z dodatnimi wynikami zarówno w badaniu EIA, jak i w Western Blot.
Wyniki i wnioski: Procleix HIV1/HCV jest bardzo czułym testem i może być wykorzystywany w laboratorium referencyjnym do potwierdzania aktywnego zakażenia u dawców z dodatnim wynikiem immunoezymatycznych badań przeglądowych. Obserwowano małą częstość aktywnych zakażeń u dawców z powtarzalnie dodatnimi wynikami badań anty-HCV i anty-HIV. Wysoka wartość S/C (> 4) w EIA jest dobrym czynnikiem prognostycznym wykrycia RNA HCV, aczkolwiek RNA HCV może być sporadycznie wykrywane u dawców z niższą wartością S/C w EIA.

Artykuł dostępny w formacie PDF

Pokaż PDF Pobierz plik PDF

Referencje

  1. Głoskowska-Moraczewska Z, Kacperska E, Seyfried H. Assessment of anti-HCV screening and supplemental assays. Acta Haematologica Polonica. 1993; 44: 273–280.
  2. Moraczewska Z, Mikulska M, Brojer E, et al. RNA HCV detection in Polish blood donors and in plasma derivatives. Acta Haematologica Polonica. 2000; 31(4): 391–397.
  3. Brojer E. Blood screening by nucleic acid tests – current issues and perspectives. Acta Haematologica Polonica. 2003; 34(supl. 1): 28–32.
  4. Gentili G, Pisani G, Bisso G, et al. EQA Participants. Hepatitis C virus testing of plasma pools by nucleic acid amplification technology: external quality assessment. Vox Sang. 2001; 81(3): 143–147.
  5. Yang Y, Lamendola MH, Mendoza M, et al. Performance characteristics of the COBAS AmpliScreen HIV-1 test, version 1.5, an assay designed for screening plasma mini-pools. Transfusion. 2001; 41(5): 643–651.
  6. CPMP The introduction of nucleic acid amplification technology (NAT) for the detection of hepatitis C virus RNA in plasma pools. CPMP/BWP/390/97 1998.
  7. Simmonds P. Viral heterogeneity of the hepatitis C virus. Journal of Hepatology. 1999; 31: 54–60.
  8. Brojer E, Gronowska A, Medynska J, et al. The hepatitis C virus genotype and subtype frequency in hepatitis C virus RNA-positive, hepatitis C virus antibody-negative blood donors identified in the nucleic acid test screening program in Poland. Transfusion. 2004; 44(12): 1706–1710.
  9. Raghuraman S, Subramaniam T, Daniel D, et al. Occurrence of false positives during testing for antibodies to hepatitis C virus among volunteer blood donors in India. J Clin Microbiol. 2003; 41(4): 1788–1790.
  10. Seed CR, Margaritis AR, Bolton WV, et al. Virology Subcommittee of the National Donor and Product Safety Committee, Australian Red Cross Blood Service. Improved efficiency of national HIV, HCV, and HTLV antibody testing algorithms based on sequential screening immunoassays. Transfusion. 2003; 43(2): 226–234.
  11. Alter MJ, Kruszon-Moran D, Nainan OV, et al. The prevalence of hepatitis C virus infection in the United States, 1988 through 1994. N Engl J Med. 1999; 341(8): 556–562.
  12. Dufour DR, Talastas M, Fernandez MDA, et al. Low-positive anti-hepatitis C virus enzyme immunoassay results: an important predictor of low likelihood of hepatitis C infection. Clin Chem. 2003; 49(3): 479–486.
  13. Hyland C, Seed CR, Kiely P, et al. Follow-up of six blood donors highlights the complementary role and limitations of hepatitis C virus antibody and nucleic acid amplification tests. Vox Sang. 2003; 85(1): 1–8.
  14. Caudai C, Padula MG, Bastianoni I, et al. Antibody testing and RT-PCR results in hepatitis C virus (HCV) infection: HCV-RNA detection in PBMC of plasma viremia-negative HCV-seropositive persons. Infection. 1998; 26(3): 151–154.
  15. Rodger AJ, Roberts S, Lanigan A, et al. Assessment of long-term outcomes of community-acquired hepatitis C infection in a cohort with sera stored from 1971 to 1975. Hepatology. 2000; 32(3): 582–587.
  16. Seeff LB, Hollinger FB, Alter HJ, et al. Long-term mortality and morbidity of transfusion-associated non-A, non-B, and type C hepatitis: A National Heart, Lung, and Blood Institute collaborative study. Hepatology. 2001; 33(2): 455–463.
  17. Ownby HE, Korelitz JJ, Busch MP, et al. Loss of volunteer blood donors because of unconfirmed enzyme immunoassay screening results. Retrovirus Epidemiology Donor Study. Transfusion. 1997; 37(2): 199–205.
  18. Sharma UK, Stramer SL, Wright DJ, et al. Retrovirus Epidemiology Donor Study. Impact of changes in viral marker screening assays. Transfusion. 2003; 43(2): 202–214.
  19. Georgoulias VA, Malliaraki NE, Theodoropoulou M, et al. Indeterminate human immunodeficiency virus type 1 western blot may indicate an abortive infection in some low-risk blood donors. Transfusion. 1997; 37(1): 65–72.
  20. Allain JP, Kitchen A, Aloysius S, et al. Safety and efficacy of hepatitis C virus antibody screening of blood donors with two sequential screening assays. Transfusion. 1996; 36(5): 401–405.



Journal of Transfusion Medicine