Multimedialna platforma wiedzy medycznej Internetowa Księgarnia Medyczna Kalendarium Konferencji
Ginekologia i Perinatologia Praktyczna
MENU
Na skróty Zdeponuj artykuł Wytyczne dla autorów Ahead of print Recenzenci 2023

dostęp otwarty

Tom 3, Nr 2 (2018)
Artykuł przeglądowy
Opublikowany online: 2018-08-31
Pokaż PDF Pobierz plik PDF
Pobierz cytowanie

Programowanie płodowe

Żaneta Kimber-Trojnar1, Aleksandra Marciniak2, Jolanta Patro-Małysza1, Beata Marciniak1, Grażyna Mielnik-Niedzielska2, Bożena Leszczyńska-Gorzelak1
Ginekologia i Perinatologia Praktyczna 2018;3(2):58-63.
Afiliacje
  1. Katedra i Klinika Położnictwa i Perinatologii, Uniwersytet Medyczny w Lublinie, ul. Jaczewskiego 8, 20-954 Lublin
  2. Katedra i Klinika Otolaryngologii Dziecięcej, Foniatrii i Audiologii, Uniwersytet Medyczny w Lublinie, ul. Gębali 6, 20-093 Lublin

dostęp otwarty

Tom 3, Nr 2 (2018)
Prace poglądowe
Opublikowany online: 2018-08-31

Streszczenie

Programowanie wewnątrzmaciczne zachodzi podczas rozwoju zarodkowego i płodowego, które są uznawane za
krytyczny okres zarówno w procesie tworzenia tkanek i narządów, jak i w etiologii chorób cywilizacyjnych. Dzieje
się tak zwłaszcza wtedy, gdy wpływ niekorzystnego środowiska nakłada się na genetyczną predyspozycję. Koncepcja
programowania płodowego zakłada, że zaburzenia metaboliczne i nieprawidłowe odżywianie ciężarnej mogą
mieć trwały i międzypokoleniowy wpływ na zdrowie potomstwa i rozwój chorób cywilizacyjnych, takich jak otyłość,
cukrzyca, czy choroby układu sercowo-naczyniowego.

Streszczenie

Programowanie wewnątrzmaciczne zachodzi podczas rozwoju zarodkowego i płodowego, które są uznawane za
krytyczny okres zarówno w procesie tworzenia tkanek i narządów, jak i w etiologii chorób cywilizacyjnych. Dzieje
się tak zwłaszcza wtedy, gdy wpływ niekorzystnego środowiska nakłada się na genetyczną predyspozycję. Koncepcja
programowania płodowego zakłada, że zaburzenia metaboliczne i nieprawidłowe odżywianie ciężarnej mogą
mieć trwały i międzypokoleniowy wpływ na zdrowie potomstwa i rozwój chorób cywilizacyjnych, takich jak otyłość,
cukrzyca, czy choroby układu sercowo-naczyniowego.

Pełny tekst:

Pokaż PDF Pobierz plik PDF
Pobierz cytowanie

Słowa kluczowe

programowanie płodowe; ciąża; rozwój płodu; stan odżywienia; choroby układu sercowo-naczyniowego; zespół metaboliczny

Informacje o artykule
Tytuł

Programowanie płodowe

Czasopismo

Ginekologia i Perinatologia Praktyczna

Numer

Tom 3, Nr 2 (2018)

Typ artykułu

Artykuł przeglądowy

Strony

58-63

Opublikowany online

2018-08-31

Wyświetlenia strony

1438

Wyświetlenia/pobrania artykułu

4657

Rekord bibliograficzny

Ginekologia i Perinatologia Praktyczna 2018;3(2):58-63.

Słowa kluczowe

programowanie płodowe
ciąża
rozwój płodu
stan odżywienia
choroby układu sercowo-naczyniowego
zespół metaboliczny

Autorzy

Żaneta Kimber-Trojnar
Aleksandra Marciniak
Jolanta Patro-Małysza
Beata Marciniak
Grażyna Mielnik-Niedzielska
Bożena Leszczyńska-Gorzelak

Referencje (50)
  1. Crispi F, Miranda J, Gratacós E. Long-term cardiovascular consequences of fetal growth restriction: biology, clinical implications, and opportunities for prevention of adult disease. Am J Obstet Gynecol. 2018; 218(2S): S869–S879.
    CrossRefPubMed
  2. Hales CN, Barker DJP. Type 2 (non-insulin-dependent) diabetes mellitus: the thrifty phenotype hypothesis. 1992. Int J Epidemiol. 2013; 42(5): 1215–1222.
    CrossRefPubMed
  3. Salam RA, Das JK, Bhutta ZA. Impact of intrauterine growth restriction on long-term health. Curr Opin Clin Nutr Metab Care. 2014; 17(3): 249–254.
    CrossRefPubMed
  4. Perrone S, Santacroce A, Picardi A, et al. Fetal programming and early identification of newborns at high risk of free radical-mediated diseases. World J Clin Pediatr. 2016; 5(2): 172–181.
    CrossRefPubMed
  5. Marciniak A, Patro-Małysza J, Kimber-Trojnar Ż, et al. Fetal programming of the metabolic syndrome. Taiwan J Obstet Gynecol. 2017; 56(2): 133–138.
    CrossRefPubMed
  6. Hales C, Barker D. The thrifty phenotype hypothesis. Br. Med. Bull. 2001; 60(1): 5–20.
    CrossRef
  7. Berry DC, Boggess K, Johnson QB. Management of Pregnant Women with Type 2 Diabetes Mellitus and the Consequences of Fetal Programming in Their Offspring. Curr Diab Rep. 2016; 16(5): 36.
    CrossRefPubMed
  8. Saffery R, Novakovic B. Epigenetics as the mediator of fetal programming of adult onset disease: what is the evidence? Acta Obstet Gynecol Scand. 2014; 93(11): 1090–1098.
    CrossRefPubMed
  9. Kwon EJ, Kim YJu. What is fetal programming?: a lifetime health is under the control of in utero health. Obstet Gynecol Sci. 2017; 60(6): 506–519.
    CrossRefPubMed
  10. Marco A, Kisliouk T, Tabachnik T, et al. Overweight and CpG methylation of the Pomc promoter in offspring of high-fat-diet-fed dams are not. FASEB J. 2014; 28(9): 4148–4157.
    CrossRefPubMed
  11. Ornoy A. Prenatal origin of obesity and their complications: Gestational diabetes, maternal overweight and the paradoxical effects of fetal growth restriction and macrosomia. Reprod Toxicol. 2011; 32(2): 205–212.
    CrossRefPubMed
  12. Edvardsson VO, Steinthorsdottir SD, Eliasdottir SB, et al. Birth weight and childhood blood pressure. Curr Hypertens Rep. 2012; 14(6): 596–602.
    CrossRefPubMed
  13. Waddington CH. The epigenotype. 1942. Int J Epidemiol. 2012; 41(1): 10–13.
    CrossRefPubMed
  14. Seremak-Mrozikiewicz A, Barlik M, Drews K. Programowanie wewnątrzmaciczne jako przyczyna chorób przewlekłych wieku dorosłego. Ginekol Pol. 2014; 85: 43–48.
  15. Lester BM, Marsit CJ. Epigenetic mechanisms in the placenta related to infant neurodevelopment. Epigenomics. 2018; 10(3): 321–333.
    CrossRefPubMed
  16. van Abeelen AFM, Elias SG, Bossuyt PMM, et al. Famine exposure in the young and the risk of type 2 diabetes in adulthood. Diabetes. 2012; 61(9): 2255–2260.
    CrossRefPubMed
  17. de Rooij SR, Painter RC, Holleman F, et al. The metabolic syndrome in adults prenatally exposed to the Dutch famine. Am J Clin Nutr. 2007; 86(4): 1219–1224.
    CrossRefPubMed
  18. Ekamper P, van Poppel F, Stein AD, et al. Independent and additive association of prenatal famine exposure and intermediary life conditions with adult mortality between age 18-63 years. Soc Sci Med. 2014; 119: 232–239.
    CrossRefPubMed
  19. Ponzio BF, Carvalho MH, Fortes ZB, et al. Implications of maternal nutrient restriction in transgenerational programming of hypertension and endothelial dysfunction across F1-F3 offspring. Life Sci. 2012; 90(15-16): 571–577.
    CrossRefPubMed
  20. Bertram C, Khan O, Ohri S, et al. Transgenerational effects of prenatal nutrient restriction on cardiovascular and hypothalamic-pituitary-adrenal function. J Physiol. 2008; 586(8): 2217–2229.
    CrossRefPubMed
  21. Raychaudhuri N, Raychaudhuri S, Thamotharan M, et al. Histone code modifications repress glucose transporter 4 expression in the intrauterine growth-restricted offspring. J Biol Chem. 2008; 283(20): 13611–13626.
    CrossRefPubMed
  22. Snoeck A, Remacle C, Reusens B, et al. Effect of a low protein diet during pregnancy on the fetal rat endocrine pancreas. Biol Neonate. 1990; 57(2): 107–118.
    CrossRefPubMed
  23. Sedaghat K , Zahediasl S , Ghasemi A Intrauterine programming Iran J Basic Med Sci. 2015; 18: 212–220.
  24. Sathishkumar K, Balakrishnan M, Chinnathambi V, et al. Temporal alterations in vascular angiotensin receptors and vasomotor responses in offspring of protein-restricted rat dams. Am J Obstet Gynecol. 2012; 206(6): 507.e1–507.10.
    CrossRefPubMed
  25. Tsukuda K, Mogi M, Iwanami J, et al. Influence of angiotensin II type 1 receptor-associated protein on prenatal development and adult hypertension after maternal dietary protein restriction during pregnancy. J Am Soc Hypertens. 2012; 6(5): 324–330.
    CrossRefPubMed
  26. Khandelwal P, Jain V, Gupta AK, et al. Association of early postnatal growth trajectory with body composition in term low birth weight infants. J Dev Orig Health Dis. 2014; 5(3): 189–196.
    CrossRefPubMed
  27. Jousse C, Parry L, Lambert-Langlais S, et al. Perinatal undernutrition affects the methylation and expression of the leptin gene in adults: implication for the understanding of metabolic syndrome. FASEB J. 2011; 25(9): 3271–3278.
    CrossRefPubMed
  28. Cianfarani S, Germani D, Branca F. Low birthweight and adult insulin resistance: the. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed. 1999; 81(1): F71–F73.
    PubMed
  29. Jou MY, Lönnerdal Bo, Philipps AF. Maternal zinc restriction affects postnatal growth and glucose homeostasis in rat offspring differently depending upon adequacy of their nutrient intake. Pediatr Res. 2012; 71(3): 228–234.
    CrossRefPubMed
  30. Muthayya S, Kurpad AV, Duggan CP, et al. Low maternal vitamin B12 status is associated with intrauterine growth retardation in urban South Indians. Eur J Clin Nutr. 2006; 60(6): 791–801.
    CrossRefPubMed
  31. Yajnik CS, Deshpande SS, Jackson AA, et al. Vitamin B12 and folate concentrations during pregnancy and insulin resistance in the offspring: the Pune Maternal Nutrition Study. Diabetologia. 2008; 51(1): 29–38.
    CrossRefPubMed
  32. Lewis RM, Petry CJ, Ozanne SE, et al. Effects of maternal iron restriction in the rat on blood pressure, glucose tolerance, and serum lipids in the 3-month-old offspring. Metabolism. 2001; 50(5): 562–567.
    CrossRefPubMed
  33. Yan X, Huang Y, Zhao JX, et al. Maternal obesity downregulates microRNA let-7g expression, a possible mechanism for enhanced adipogenesis during ovine fetal skeletal muscle development. Int J Obes (Lond). 2013; 37(4): 568–575.
    CrossRefPubMed
  34. Frias AE, Grove KL. Obesity: a transgenerational problem linked to nutrition during pregnancy. Semin Reprod Med. 2012; 30(6): 472–478.
    CrossRefPubMed
  35. Heerwagen MJR, Miller MR, Barbour LA, et al. Maternal obesity and fetal metabolic programming: a fertile epigenetic soil. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2010; 299(3): R711–R722.
    CrossRefPubMed
  36. Dabelea D, Crume T. Maternal environment and the transgenerational cycle of obesity and diabetes. Diabetes. 2011; 60(7): 1849–1855.
    CrossRefPubMed
  37. Guénard F, Deshaies Y, Cianflone K, et al. Differential methylation in glucoregulatory genes of offspring born before vs. after maternal gastrointestinal bypass surgery. Proc Natl Acad Sci U S A. 2013; 110(28): 11439–11444.
    CrossRefPubMed
  38. Hou M, Chu Z, Liu T, et al. A high-fat maternal diet decreases adiponectin receptor-1 expression in offspring. J Matern Fetal Neonatal Med. 2015; 28(2): 216–221.
    CrossRefPubMed
  39. Fan L, Lindsley SR, Comstock SM, et al. Maternal high-fat diet impacts endothelial function in nonhuman primate offspring. Int J Obes (Lond). 2013; 37(2): 254–262.
    CrossRefPubMed
  40. Rodríguez-Rodríguez P, Ramiro-Cortijo D, Reyes-Hernández CG, et al. Implication of Oxidative Stress in Fetal Programming of Cardiovascular Disease. Front Physiol. 2018; 9: 602.
    CrossRefPubMed
  41. Xu J, Ye J, Wu Y, et al. Reduced fetal telomere length in gestational diabetes. PLoS One. 2014; 9(1): e86161.
    CrossRefPubMed
  42. Smith CJ, Ryckman KK. Epigenetic and developmental influences on the risk of obesity, diabetes, and metabolic syndrome. Diabetes Metab Syndr Obes. 2015; 8: 295–302.
    CrossRefPubMed
  43. Drake AJ, Liu L. Intergenerational transmission of programmed effects: public health consequences. Trends Endocrinol Metab. 2010; 21(4): 206–213.
    CrossRefPubMed
  44. Monk M, Boubelik M, Lehnert S. Temporal and regional changes in DNA methylation in the embryonic, extraembryonic and germ cell lineages during mouse embryo development. Development. 1987; 99(3): 371–382.
    PubMed
  45. Cardozo E, Pavone ME, Hirshfeld-Cytron JE. Metabolic syndrome and oocyte quality. Trends Endocrinol Metab. 2011; 22(3): 103–109.
    CrossRefPubMed
  46. Zambrano E, Martínez-Samayoa PM, Bautista CJ, et al. Sex differences in transgenerational alterations of growth and metabolism in progeny (F2) of female offspring (F1) of rats fed a low protein diet during pregnancy and lactation. J Physiol. 2005; 566(Pt 1): 225–236.
    CrossRefPubMed
  47. Dowse GK, Zimmet PZ, Finch CF, et al. Decline in incidence of epidemic glucose intolerance in Nauruans: implications for the. Am J Epidemiol. 1991; 133(11): 1093–1104.
    PubMed
  48. Timmermans S, Steegers-Theunissen RP, Vujkovic M, et al. The Mediterranean diet and fetal size parameters: the Generation R Study. Br J Nutr. 2012; 108(8): 1399–1409.
    CrossRefPubMed
  49. Lillycrop KA, Phillips ES, Jackson AA, et al. Dietary protein restriction of pregnant rats induces and folic acid supplementation prevents epigenetic modification of hepatic gene expression in the offspring. J Nutr. 2005; 135(6): 1382–1386.
    CrossRefPubMed
  50. Tang C, Marchand K, Lam L, et al. Maternal taurine supplementation in rats partially prevents the adverse effects of early-life protein deprivation on β-cell function and insulin sensitivity. Reproduction. 2013; 145(6): 609–620.
    CrossRefPubMed

Regulamin

Ważne: serwis https://journals.viamedica.pl/ wykorzystuje pliki cookies. Więcej >>

Używamy informacji zapisanych za pomocą plików cookies m.in. w celach statystycznych, dostosowania serwisu do potrzeb użytkownika (np. język interfejsu) i do obsługi logowania użytkowników. W ustawieniach przeglądarki internetowej można zmienić opcje dotyczące cookies. Korzystanie z serwisu bez zmiany ustawień dotyczących cookies oznacza, że będą one zapisane w pamięci komputera. Więcej informacji można znaleźć w naszej Polityce prywatności.

Czym są i do czego służą pliki cookie możesz dowiedzieć się na stronie wszystkoociasteczkach.pl.

Wydawcą serwisu jest VM Media Group sp. z o.o., ul. Świętokrzyska 73, 80–180 Gdańsk

tel.:+48 58 320 94 94, faks:+48 58 320 94 60, e-mail:  viamedica@viamedica.pl