Tom 10, Nr 1-2 (2024)
Artykuł przeglądowy
Opublikowany online: 2024-10-21
Wyświetlenia strony 40
Wyświetlenia/pobrania artykułu 6
Pobierz cytowanie

Eksport do Mediów Społecznościowych

Eksport do Mediów Społecznościowych

PRACA POGLĄDOWA

Published by Via Medica. All rights reserved.

e-ISSN 2450–1719

ISSN 2450–0526

Nadciśnienie Tętnicze w Praktyce

Rok 2024, tom 10, nr 1–2

Strony: 23–30

Nadciśnienie tętnicze i układ immunologiczny czy istnieje między nimi związek?

Anna Magdalena Dzieża-Grudnik1Joanna Sulicka-Grodzicka2
1Katedra Chorób Wewnętrznych i Gerontologii Collegium Medicum Uniwersytetu Jagiellońskiego w Krakowie
2Klinika Reumatologii i Immunologii, Collegium Medicum, Uniwersytet Jagielloński w Krakowie

Adres do korespondencji: Anna Magdalena Dzieża-Grudnik, Katedra Chorób Wewnętrznych i Gerontologii Collegium Medicum Uniwersytetu Jagiellońskiego w Krakowie; e-mail: anna.dzieza@uj.edu.pl

STRESZCZENIE
W pracy omówiono najważniejsze doniesienia wskazujące na obecność związku pomiędzy stanem zapalnym, układem immunologicznym a rozwojem nadciśnienia tętniczego i uszkodzeń narządowych.
Słowa kluczowe: nadciśnienie tętnicze; układ immunologiczny; stan zapalny
Nadciśnienie Tętnicze w Praktyce 2024, tom 10, nr 1–2, strony: 23–30

Wprowadzenie

Związek pomiędzy układem immunologicznym a sercowo-naczyniowym jest ciekawym i wciąż badanym zagadnieniem. Choć pierwsze obserwacje wskazujące na jego istnienie liczą już kilkadziesiąt lat, to dopiero ostatni okres dostarczył przekonujących dowodów potwierdzających tą zależność.

Celem poniższej pracy jest przedstawienie związku pomiędzy układem immunologicznym a podwyższonymi wartościami ciśnienia tętniczego krwi.

Odpowiedź immunologiczna — podstawowe informacje

Główną rolą układu immunologicznego jest ochrona organizmu przed patogenami i nowotworami. Układ immunologiczny zbudowany jest z narządów centralnych, takich jak szpik kostny i grasica, oraz narządów obwodowych, takich jak śledziona, węzły chłonne, tkanka limfoidalna związana z błoną śluzową (MALT, mucosa-associated lymphoid tissue). Należą do niego także naczynia limfatyczne i krążące leukocyty. Odpowiedź immunologiczna obejmuje dwie główne składowe: odpowiedź nieswoistą (innate immunity) i swoistą (adaptive immunity), które ściśle ze sobą współdziałają [1] (ryc. 1).

83195.png
Rycina 1. Odporność nieswoista i swoista. NK (natural killers) naturalni zabójcy; TCR (T-cell receptor) receptor limfocytu T. Zmodyfikowano na podstawie [1]
Odpowiedź nieswoista

W odpowiedź nieswoistą zaangażowane są bariery anatomiczne skóry i błon śluzowych, dopełniacz, białka ostrej fazy, czynniki bakteriobójcze, bakteriostatyczne i przeciwnowotworowe [m.in. laktoferyna, lizozym, defensyny, kalprotektyna, czynnik martwicy nowotworów (TNF, tumor necrosis factor), interleukina 1 (IL-1), chemokiny] oraz komórki układu odpornościowego (m.in. neutrofile, bazofile, eozynofile, monocyty, makrofagi, komórki dendrytyczne, komórki naturalni zabójcy (NK, natural killers), komórki Langerhansa, mastocyty).

Mechanizmy odporności wrodzonej są aktywowane po wykryciu endogennych (DAMP, damage-associated molecular patterns, wzorce molekularne związane z uszkodzeniem) i egzogennych (PAMP, pathogen-associated molecular patterns, wzorce molekularne związane z patogenami) struktur/sygnałów zagrożenia organizmu, czyli odpowiednio uszkodzonych komórek i drobnoustrojów. Sygnały zagrożenia są wykrywane przez receptory rozpoznające wzorce (PRR, pattern recognition receptors), które mogą być zlokalizowane zarówno w błonie komórkowej (TLR, Toll-like receptors), jak i w obrębie cytoplazmy (NLR, NOD-like receptors) [1]. Ich aktywacja prowadzi do aktywacji enzymu kaspazy-1 oraz syntezy cytokin prozapalnych, czyli aktywacji białek inflammasomu. Aktywacja inflammasomu prowadzi do rozwoju ostrego stanu zapalnego (reakcja miejscowa i ogólnoustrojowa).

Odpowiedź swoista

Odpowiedź swoista (nabyta) obejmuje odpowiedź humoralną i komórkową.

Pierwsza z nich jest związana z powstawaniem antygenowo swoistych przeciwciał wytwarzanych przez limfocyty B, które po pobudzeniu odpowiednim antygenem przekształcają się w komórki plazmatyczne. Limfocyty B rozpoznają antygeny (związane w kompleksach, z powierzchnią komórek lub rozpuszczone) za pośrednictwem receptorów immunoglobulinowych limfocyta B (BCR, B cell receptor). Antygen jest prezentowany przez wyspecjalizowaną komórkę (APC, antygen presenting cell), np. limfocyty B, komórki dendrytyczne, monocyty/makrofagi, w kontekście MHC klasy II (major histocompatability complex) limfocytom pomocniczym Th2, które rozpoznają go za pomocą receptorów limfocytów T (TCR, T-cell receptor), przy udziale molekuł adhezyjnych (CD80/ CD86 na APC i CD28 na limfocycie Th) i cytokin (m.in. IL-1, IL-6, TNFα, IL-4, IL-10). W rezultacie dochodzi do aktywacji limfocytów B, które stają się komórkami efektorowymi.

W odpowiedzi komórkowej uczestniczą limfocyty T cytotoksyczne (Tc) rozpoznające antygeny prezentowane w kontekście MHC klasy I przez komórki APC. Aktywowane limfocyty Tc wydzielają IL-2 i różnicują się w komórki efektorowe i pamięci. Ponowny kontakt z tym samym antygenem prowadzi do wtórnej odpowiedzi limfocytów Tc pamięci, która jest szybka i swoista.

Nadciśnienie tętnicze a układ immunologiczny — czy istnieją dowody wskazujące na związek?

Dostępnych jest wiele wyników badań wskazujących na związek pomiędzy aktywacją układu immunologicznego a wysokością ciśnienia tętniczego krwi. Zależności te obserwowano zarówno na poziomie genomu (aktywacja/inaktywacja grup genów wpływała jednocześnie na wartości ciśnienia oraz aktywność układu immunologicznego [2]), podwyższonych stężeń cytokin zapalnych oraz zwiększonej liczby komórek prozapalnych [3–5] u zwierząt lub pacjentów z nadciśnieniem tętniczym. Wykazano, iż niektóre geny biorące udział w regulacji wartości ciśnienia tętniczego jednocześnie wpływają na komórki układu immunologicznego, ich aktywację lub różnicowanie [2, 6]. Stężenia wskaźników zapalnych, takich jak: białko C-reaktywne (CRP, C-reactive protein) IL-6, Il-1β, TNFγ, IL-18 oraz chemokina 2 (CCL2, CC-chemokin ligand-2) w krwi obwodowej wzrastają wraz ze wzrostem wartości ciśnienia tętniczego [5]. Już wiele lat temu zaobserwowano wyższe stężenie immunoglobuliny G (IgG) w surowicy pacjentów z nadciśnieniem tętniczym w porównaniu z grupą kontrolną [7, 8]. W ostatnim czasie Siedliński i wsp. wykazali związek, potencjalnie przyczynowy, pomiędzy wartościami ciśnienia tętniczego a liczbą limfocytów we krwi obwodowej w grupie ponad 500 000 osób [9]. Zwiększoną liczbę limfocytów Th1 i Th17 w śledzionie, naczyniach krwionośnych i nerkach obserwowano zarówno u zwierząt, jak i u ludzi z nadciśnieniem tętniczym [10–12]. Wykazano obecność nacieków limfocytów T CD4+ i CD8+ w nerkach zwierząt z nadciśnieniem tętniczym, jednak jedynie limfocyty CD8+ były aktywowane antygenowo [13]. Natomiast u zwierząt pozbawionych limfocytów T i B (mysi model ciężkiego złożonego niedoboru odporności lub szczep myszy Rag1 –/–) nie obserwowano wzrostu wartości ciśnienia tętniczego i uszkodzeń narządowych pomimo podawania angiotensyny II (Ang II) lub aldosteronu [14, 15], jednocześnie transfer limfocytów T powodował u myszy wzrost wartości ciśnienia tętniczego i dysfunkcję endotelium [14]. Podobnych wyników dostarczyły prace przeprowadzone na szczurach Dahl pozbawionych genu Rag1, stymulowanych dietą wysokosodową [16], wlewem Ang II [17] lub dietą bogatobiałkową [18]. Limfocyty T mogą w nerkach wpływać na absorbcję sodu i wody poprzez bezpośrednie działanie na kotransporter sodowo-chlorkowy [19].

83205.png
Rycina 2. Mechanizmy reakcji zapalnej. DAMPs (damage-associated molecular patterns) wzorce molekularne związane z uszkodzeniem; TLR (Toll-like receptor) receptor Toll-podobny; NLRP3 (NLR-pyrrin-domain-containing 3) białko 3 zawierające domeny NOD, LRR i pirynowe; iNKT (invariant natural killer T-cells) niezmienne komórki naturalnych zabójców; IL-10 (interleukin 10) interleukina 10. Zmodyfikowano na podstawie [3] oraz [5]

Stwierdzono istnienie związku pomiędzy stanem zapalnym a nadciśnieniem tętniczym u pacjentów z przewlekłymi chorobami zapalnymi, między innymi z reumatoidalnym zapaleniem stawów, łuszczycowym zapaleniem stawów, zesztywniającym zapaleniem stawów kręgosłupa lub zapaleniem przyzębia [20–24]. W tych grupach chorych nadciśnienie tętnicze rozwija się wcześniej i jest trudniejsze do leczenia. Jego rozwój, poza klasycznymi czynnikami ryzyka sercowo-naczyniowego, może być konsekwencją przewlekłego stanu zapalnego lub też efektem wdrożonego leczenia (m.in. długotrwałe stosowanie glikokorytykoidów) [25]. Przewlekły stan zapalny, poprzez promowanie tworzenia DAMPs lub immunizację przez antygeny niezwiązane bezpośrednio z regulacją ciśnienia krwi (np. zakażenie Porphyromonas gingivalis) [26] może indukować rozwój nadciśnienia tętniczego [3]. Pośrednich dowodów na udział czynników zapalnych w kontroli ciśnienia tętniczego krwi u pacjentów z chorobami zapalnymi dostarczają także badania z wykorzystaniem leków wpływających bezpośrednio na stężenie lub dostępność interleukin zapalnych [27]. Podawanie mykofenolanu mofetylu pacjentom z reumatoidalnym zapaleniem stawów lub łuszczycą oraz towarzyszącym nadciśnieniem tętniczym skutkowało spadkiem ciśnienia skurczowego i rozkurczowego oraz zmniejszeniem nerkowej sekrecji TNFα [28]. Podobnie Murray i wsp. zaobserwowali spadek wartości ciśnienia tętniczego u pacjentów leczonych inhibitorami TNFα. Jednocześnie w metaanalizie 11 randomizowanych badań klinicznych obejmujących pacjentów z reumatoidalnym zapaleniem stawów, leczonych inhibitorami TNFα, wykazano zwiększenie ryzyka rozwoju nadciśnienia tętniczego [29]. Wyniki badań z wykorzystaniem przeciwciał monoklonalnych przeciwko IL-17 nie są jednoznaczne, obserwowano zarówno spadek, jak i brak wpływu takiego leczenia na wartości ciśnienia tętniczego [27]. W badaniu CANTOS [30] oceniano wpływ leczenia kanakinumabem (przeciwciało monoklonalne przeciwko IL-1β) na redukcję ciśnienia tętniczego krwi i częstość występowania nadciśnienia tętniczego. Terapia kanakinumabem nie obniżała wartości ciśnienia tętniczego niezależnie od wyjściowych wartości stężenia białka C-reaktywnego wysokiej czułości (hsCRP, high-sensitivity C-reactive protein) jednocześnie odnotowano redukcję częstości zdarzeń sercowo-naczyniowych.

Patomechanizm aktywacji odpowiedzi immunologicznej w nadciśnieniu tętniczym

Wpływ układu immunologicznego na rozwój nadciśnienia tętniczego jest niezwykle złożony i obejmuje aktywację odpowiedzi zarówno nieswoistej, jak i swoistej [3]. Można wyodrębnić dwie fazy odpowiedzi zapalnej, początkową, związaną z inicjacją i eskalacją stanu zapalnego oraz późniejszą, związaną z propagacją zapalenia i zajęciem przez aktywowane komórki zapalne struktur bezpośrednio regulujących wartości ciśnienia tętniczego krwi [5].

Precyzyjna identyfikacja czynników inicjujących stan zapalny nie jest jeszcze w pełni poznana, ale z dużym prawdopodobieństwem można przyjąć, że m.in. przewlekła nadmierna aktywacja układu współczulnego, nadmierna aktywność układu reninaangiotensynaaldosteron, wysokie spożycie soli, stres, otyłość, dysfunkcja mikrobiomu, mechaniczne siły oddziałujące na naczynie prowadzą do mechanicznego lub oksydacyjnego uszkodzenia tkanek [5] i w konsekwencji do uwolnienia alarmin (DAMPs) oraz powstania neoantygenów [3]. Neoantygenami nazywane są endogenne molekuły, które w wyniku różnych modyfikacji przestały być rozpoznawane jako własne i zachowują się jak obce antygeny [31], w konsekwencji czego mają zdolność aktywacji odpowiedzi immunologicznej. Zarówno alarminy, jak i neoantygeny oddziałują na odporność wrodzoną i nabytą.

Jak wspomniano we wstępie, alarminy, poprzez aktywację receptorów TLR zlokalizowanych na makrofagach i komórkach dendrytycznych, aktywują inflamasom, w szczególności białko 3 zawierające domeny NOD, LRR i pirynowe (NLRP3, NLR pyrin-domain-containing 3). Kluczowe dla nadciśnienia są TLR4 oraz TLR2, których ekspresja jest zwiększona w naczyniach, nerkach, sercu oraz mózgu u zwierząt z nadciśnieniem tętniczym [32], natomiast intensywne leczenie hipotensyjne powoduje zmniejszenie tej ekspresji [33]. Podobnie, nadekspresja komponentów inflamasomu NLRP3 obecna jest w narządach biorących udział w regulacji ciśnienia tętniczego krwi [34], a konsekwencją jego aktywacji jest produkcja i uwolnienie prozapalnych cytokin takich jak: IL-i IL-18, chemokina CCL2 i CCL5, co w dalszej kolejności skutkuje aktywacją kolejnych komórek układu odpornościowego. Zahamowanie inflamasomu NLRP3 prowadzi do obniżenia ciśnienia tętniczego u myszy oraz zmniejszenia dysfunkcji nerek [35, 36]. Dodatkowo inflamasom może być bezpośrednio aktywowany przez wysokie stężenie sodu oraz kryształy kwasu moczowego [37]. Do DAMPs kluczowych w nadciśnieniu należą m.in. białko o dużej ruchliwości elektroforetycznej (HMGB1, high-mobility group box 1; ligand receptora TLR4 [38]), DNA mitochondrialne (ligand receptora TLR9 [39]) lub lipopolisacharydy bakteryjne (LPS, lipopolysaccharides; ligand TLR4; ich obecność w naczyniach krwionośnych to m.in. konsekwencja zaburzonego mikrobiomu jelitowego oraz nieszczelności bariery jelitowej [40]).

Komórki dendrytyczne (należące do komórek prezentujących antygen), po fagocytozie neoantygenów oraz migracji do obwodowych narządów limfatycznych (śledziona), prezentują neoantygeny specyficzne dla nadciśnienia, pobudzając do aktywacji i różnicowania limfocyty T. Zablokowanie kostymulacji limfocyt Tkomórka dendrytyczna przez abatacept (białko fuzyjne wybiórczo hamujące drogę kostymulacji, poprzez specyficzne wiązanie z CD80 i CD86 blokada II sygnału w obrębie synapsy immunologicznej) u myszy prowadziło do zahamowania rozwoju nadciśnienia indukowanego przez Ang II lub octan deoksykortykosteronu (DOCA, deoxycorticosterone acetate) i związanej z tym dysfunkcji naczyń [41]. Jako neoantygen funkcjonować mogą także białka szoku cieplnego (HSP70, heat shock proteins) [42] lub izolewuglandyny (powstające na skutek nieenzymatycznej peroksydacji lipidów jako efekt działania wolnych rodników tlenowych), które aktywują komórki dendrytyczne, zwiększając ekspresją na ich powierzchni CD80/CD86 [43].

Limfocyty B pod wpływem neoantygenów i przy współpracy limfocytów Th w obwodowych narządach limfatycznych przekształcają się w komórki plazmatyczne i rozpoczynają produkcję autoprzeciwciał. Kompleksy immunologiczne (kompleksy antygenprzeciwciało), poprzez stymulację receptorów FcγR na makrofagach i aktywację układu dopełniacza, promującą dalszy rozwój zapalenia, nasilają dysfunkcję endotelium i remodeling naczyniowy [3]. Dodatkowo, niektóre z przeciwciał mogą w bezpośredni sposób oddziaływać na receptory lub kanały jonowe w narządach odpowiedzialnych za utrzymanie prawidłowego ciśnienia tętniczego krwi (np. α1 receptory adrenergiczne, β1 receptory, AT I, kanały wapniowe) [44, 45]. Ponadto, stwierdzono zwiększone miana przeciwciał przeciwko HSP60 i HSP70 u pacjentów z nadciśnieniem w porównaniu z grupą kontrolą [46].

Większość aktywowanych limfocytów T ostatecznie ginie po ustąpieniu działania antygenu i odpowiedzi immunologicznej, część staje się komórkami T pamięci, które mogą przetrwać u ludzi przez wiele lat. Po ponownej ekspozycji na antygen te komórki pamięci mogą zostać szybko reaktywowane, migrują ze szpiku kostnego do nerek oraz naczyń i są źródłem cytokin, m.in. interferon gamma (INFγ, interferone gamma) i IL-17 [11, 47].

Pod wpływem różnych czynników, m.in. Ang II lub diety wysokosodowej, w narządach docelowych bezpośrednio odpowiedzialnych za regulację wartości ciśnienia tętniczego krwi, produkowane i wydzielane są chemokiny i molekuły adhezyjne (np. CCL1, CCL5) [48]. Pod ich wpływem komórki zapalne (monocyty, makrofagi, komórki dendrytyczne, komórki supresorowe szpiku, granulocyty, limfocyty T) przemieszczają się do serca, naczyń krwionośnych, nerek, w których wydzielają kolejne cytokiny (m.in. IL-6, TNFα, IFNγ, IL-17, IL-9). Skutkuje to dalszym nasileniem lokalnego stanu zapalnego, prowadząc do dysfunkcji endotelium, wzrostu oporu obwodowego oraz wartości ciśnienia tętniczego krwi. Cytokiny zapalne hamują działanie syntazy tlenku azotu (NO, nitric oxide), generują tworzenie wolnych rodników tlenowych, stymulują dalszą ekspresję molekuł adhezyjnych, nasilają hipertrofię i włóknienie. IL-17A podnosi wartości ciśnienia tętniczego, zmniejsza zależną od NO wazodylatację naczyń [49], wpływa na wzrost sztywności aorty poprzez zwiększenie odkładania kolagenu [15]. Przeciwciała skierowane przeciwko IL-17A lub jej receptorowi obniżają ciśnienie tętnicze i zmniejszają nacieki z limfocytów w nerkach i naczyniach u zwierząt poddanych działaniu Ang II [50]. TNFα obniża zdolność śródbłonka do produkcji NO [51], prowadząc do skurczu naczyń i reabsorpcji sodu w nerkach. Myszy pozbawione TNFα cechują się brakiem wzrostu ciśnienia tętniczego w porównaniu z myszami z grupy kontrolnej po podaniu Ang II [52]; podanie przeciwciał przeciwko receptorowi dla TNFα zmniejszało wartość ciśnienia tętniczego, natomiast podanie TNFα szczurom z grupy kontrolnej powodowało wzrost wartości ciśnienia tętniczego [53]. Myszy pozbawione genu dla IL-6 miały niższe wartość ciśnienia tętniczego niż myszy typu dzikiego podczas infuzji Ang II [54], podwyższone stężenie IL-6 jest niezależnym prognostykiem dysfunkcji endotelium u pacjentów z nadciśnieniem tętniczym [55]. U myszy pozbawionych INFγ stwierdzano zmniejszony przerost i włóknienie mięśnia sercowego w odpowiedzi na podawanie Ang II [56]. Z kolei limfocyty CD8+ produkują zwiększoną ilość IFNγ u pacjentów z nadciśnieniem w porównaniu z osobami zdrowymi [11].

Nadciśnienie tętnicze wiąże się z obniżoną liczbą limfocytów T regulatorowych [57], a wzrost ich stężenia lub aktywności chroni przed rozwojem samego nadciśnienia lub jego powikłań [58, 59]. Podobnie zmniejszona aktywność niezmiennych komórek naturalnych zabójców (iNKT, invariant natural killer T cells) [60] lub komórek supresorowych szpiku (MDScs, myeloid-derived suppresor cells) [61] przyczynia się do rozwoju nadciśnienia, obniżonego wytwarzania IL-10 lub wzrostu wytwarzania INFγ, IL-17. IL-10 ma działanie przeciwzapalne, podawana myszom z nadciśnieniem tętniczym zmniejsza skurczowe ciśnienie tętnicze i aktywność oksydazy zredukowanej formy fosforanu dinukleotydu nikotynoamidoadeninowego (NADPH, nicotinamide adenine dinucleotide phosphate) oraz poprawia funkcję endotelium [62]. Dodatkowo IL-10 chroni przed wzrostem ciśnienia tętniczego i uszkodzeniem endotelium związanym z podawaniem angiotensyny II [63].

Podsumowanie

Układ immunologiczny odgrywa istotną rolę w patogenezie nadciśnienia tętniczego poprzez aktywację złożonych mechanizmów stanu zapalnego obejmujących zarówno wrodzony, jak i nabyty układ odporności. W nadciśnieniu tętniczym opisano m.in. aktywację komórek układu immunologicznego oraz zwiększoną produkcję cytokin prozapalnych. Układ odpornościowy nie tylko przyczynia się do podwyższenia ciśnienia tętniczego krwi, ale także pośredniczy w powstawaniu zmian narządowych oraz ich progresji. W związku z powyższym celowane leczenie ukierunkowane na zmniejszenie wytwarzania cytokin zapalnych i aktywacji układu immunologicznego potencjalnie może prowadzić do obniżenia ciśnienia tętniczego oraz redukcji powikłań narządowych. Konieczne są jednak dalsze badania, zanim terapie immunomodulujące będą mogły być stosowane u wybranych pacjentów z nadciśnieniem tętniczym.

Piśmiennictwo

  1. Gołąb J, Nowis D, Stokłosa T. Immunologia. PWN, Warszawa 2023.
  2. Huan T, Meng Q, Saleh MA, et al. International Consortium for Blood Pressure GWAS (ICBP). Integrative network analysis reveals molecular mechanisms of blood pressure regulation. Mol Syst Biol. 2015; 11(1): 799, doi: 10.15252/msb.20145399, indexed in Pubmed: 25882670.
  3. Drummond GR, Vinh A, Guzik TJ, et al. Immune mechanisms of hypertension. Nat Rev Immunol. 2019; 19(8): 517–532, doi: 10.1038/s41577-019-0160-5, indexed in Pubmed: 30992524.
  4. Tanase DM, Gosav EM, Radu S, et al. Arterial Hypertension and Interleukins: Potential Therapeutic Target or Future Diagnostic Marker? Int J Hypertens. 2019; 2019: 3159283, doi: 10.1155/2019/3159283, indexed in Pubmed: 31186952.
  5. Guzik TJ, Nosalski R, Maffia P, et al. Immune and inflammatory mechanisms in hypertension. Nat Rev Cardiol. 2024; 21(6): 396–416, doi: 10.1038/s41569-023-00964-1, indexed in Pubmed: 38172242.
  6. Huan T, Esko T, Peters MJ, et al. International Consortium for Blood Pressure GWAS (ICBP). A meta-analysis of gene expression signatures of blood pressure and hypertension. PLoS Genet. 2015; 11(3): e1005035, doi: 10.1371/journal.pgen.1005035, indexed in Pubmed: 25785607.
  7. Ebringer A, Doyle AE. Raised serum IgG levels in hypertension. Br Med J. 1970; 2(5702): 146–148, doi: 10.1136/bmj.2.5702.146, indexed in Pubmed: 4985868.
  8. Suryaprabha P, Padma T, Rao UB. Increased serum IgG levels in essential hypertension. Immunol Lett. 1984; 8(3): 143–145, doi: 10.1016/0165-2478(84)90067-1, indexed in Pubmed: 6500633.
  9. Siedlinski M, Jozefczuk E, Xu X, et al. White Blood Cells and Blood Pressure: A Mendelian Randomization Study. Circulation. 2020; 141(16): 1307–1317, doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.119.045102, indexed in Pubmed: 32148083.
  10. Ji Q, Cheng G, Ma N, et al. Circulating Th1, Th2, and Th17 Levels in Hypertensive Patients. Dis Markers. 2017; 2017: 7146290, doi: 10.1155/2017/7146290, indexed in Pubmed: 28757677.
  11. Itani HA, McMaster WG, Saleh MA, et al. Activation of Human T Cells in Hypertension: Studies of Humanized Mice and Hypertensive Humans. Hypertension. 2016; 68(1): 123–132, doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.116.07237, indexed in Pubmed: 27217403.
  12. Shao J, Nangaku M, Miyata T, et al. Imbalance of T-cell subsets in angiotensin II-infused hypertensive rats with kidney injury. Hypertension. 2003; 42(1): 31–38, doi: 10.1161/01.HYP.0000075082.06183.4E, indexed in Pubmed: 12771047.
  13. Trott DW, Harrison DG. The immune system in hypertension. Adv Physiol Educ. 2014; 38(1): 20–24, doi: 10.1152/advan.00063.2013, indexed in Pubmed: 24585465.
  14. Guzik TJ, Hoch NE, Brown KA, et al. Role of the T cell in the genesis of angiotensin II induced hypertension and vascular dysfunction. J Exp Med. 2007; 204(10): 2449–2460, doi: 10.1084/jem.20070657, indexed in Pubmed: 17875676.
  15. Wu J, Thabet SR, Kirabo A, et al. Inflammation and mechanical stretch promote aortic stiffening in hypertension through activation of p38 mitogen-activated protein kinase. Circ Res. 2014; 114(4): 616–625, doi: 10.1161/CIRCRESAHA.114.302157, indexed in Pubmed: 24347665.
  16. Mattson DL, James L, Berdan EA, et al. Immune suppression attenuates hypertension and renal disease in the Dahl salt-sensitive rat. Hypertension. 2006; 48(1): 149–156, doi: 10.1161/01.HYP.0000228320.23697.29, indexed in Pubmed: 16754791.
  17. Wade B, Petrova G, Mattson DL. Role of immune factors in angiotensin II-induced hypertension and renal damage in Dahl salt-sensitive rats. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2018; 314(3): R323–R333, doi: 10.1152/ajpregu.00044.2017, indexed in Pubmed: 29118017.
  18. Abais-Battad JM, Lund H, Fehrenbach DJ, et al. Rag1-null Dahl SS rats reveal that adaptive immune mechanisms exacerbate high protein-induced hypertension and renal injury. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2018; 315(1): R28–R35, doi: 10.1152/ajpregu.00201.2017, indexed in Pubmed: 29537860.
  19. Liu Y, Rafferty TM, Rhee SW, et al. CD8 T cells stimulate Na-Cl co-transporter NCC in distal convoluted tubules leading to salt-sensitive hypertension. Nat Commun. 2017; 8: 14037, doi: 10.1038/ncomms14037, indexed in Pubmed: 28067240.
  20. Han C, Robinson DW, Hackett MV, et al. Cardiovascular disease and risk factors in patients with rheumatoid arthritis, psoriatic arthritis, and ankylosing spondylitis. J Rheumatol. 2006; 33(11): 2167–2172, indexed in Pubmed: 16981296.
  21. Kremers HM, Crowson CS, Therneau TM, et al. High ten-year risk of cardiovascular disease in newly diagnosed rheumatoid arthritis patients: a population-based cohort study. Arthritis Rheum. 2008; 58(8): 2268–2274, doi: 10.1002/art.23650, indexed in Pubmed: 18668561.
  22. Mathieu S, Motreff P, Soubrier M. Spondyloarthropathies: an independent cardiovascular risk factor? Joint Bone Spine. 2010; 77(6): 542–545, doi: 10.1016/j.jbspin.2010.05.001, indexed in Pubmed: 20646947.
  23. Visseren FLJ, Mach F, Smulders YM, et al. ESC National Cardiac Societies, ESC Scientific Document Group. 2021 ESC Guidelines on cardiovascular disease prevention in clinical practice. Eur Heart J. 2021; 42(34): 3227–3337, doi: 10.1093/eurheartj/ehab484, indexed in Pubmed: 34458905.
  24. Muñoz Aguilera E, Suvan J, Buti J, et al. Periodontitis is associated with hypertension: a systematic review and meta-analysis. Cardiovasc Res. 2020; 116(1): 28–39, doi: 10.1093/cvr/cvz201, indexed in Pubmed: 31549149.
  25. Small HY, Migliarino S, Czesnikiewicz-Guzik M, et al. Hypertension: Focus on autoimmunity and oxidative stress. Free Radic Biol Med. 2018; 125: 104–115, doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2018.05.085, indexed in Pubmed: 29857140.
  26. Czesnikiewicz-Guzik M, Nosalski R, Mikolajczyk TP, et al. Th1-type immune responses to Porphyromonas gingivalis antigens exacerbate angiotensin II-dependent hypertension and vascular dysfunction. Br J Pharmacol. 2019; 176(12): 1922–1931, doi: 10.1111/bph.14536, indexed in Pubmed: 30414380.
  27. Murray EC, Nosalski R, MacRitchie N, et al. Therapeutic targeting of inflammation in hypertension: from novel mechanisms to translational perspective. Cardiovasc Res. 2021; 117(13): 2589–2609, doi: 10.1093/cvr/cvab330, indexed in Pubmed: 34698811.
  28. Herrera J, Ferrebuz A, MacGregor EG, et al. Mycophenolate mofetil treatment improves hypertension in patients with psoriasis and rheumatoid arthritis. J Am Soc Nephrol. 2006; 17(12 Suppl 3): S218–S225, doi: 10.1681/ASN.2006080918, indexed in Pubmed: 17130265.
  29. Zhao Q, Hong D, Zhang Yi, et al. Association between anti-TNF therapy for rheumatoid arthritis and hypertension: a meta-analysis of randomized controlled trials. Medicine (Baltimore). 2015; 94(14): e731, doi: 10.1097/MD.0000000000000731, indexed in Pubmed: 25860222.
  30. Rothman AMk, MacFadyen J, Thuren T, et al. Effects of Interleukin-1β Inhibition on Blood Pressure, Incident Hypertension, and Residual Inflammatory Risk: A Secondary Analysis of CANTOS. Hypertension. 2020; 75(2): 477–482, doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.119.13642, indexed in Pubmed: 31884854.
  31. Rizzoni D, De Ciuceis C, Szczepaniak P, et al. Immune System and Microvascular Remodeling in Humans. Hypertension. 2022; 79(4): 691–705, doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.121.17955, indexed in Pubmed: 35098718.
  32. Bomfim GF, Dos Santos RA, Oliveira MA, et al. Toll-like receptor 4 contributes to blood pressure regulation and vascular contraction in spontaneously hypertensive rats. Clin Sci (Lond). 2012; 122(11): 535–543, doi: 10.1042/CS20110523, indexed in Pubmed: 22233532.
  33. Marketou ME, Kontaraki JE, Zacharis EA, et al. TLR2 and TLR4 gene expression in peripheral monocytes in nondiabetic hypertensive patients: the effect of intensive blood pressure-lowering. J Clin Hypertens (Greenwich). 2012; 14(5): 330–335, doi: 10.1111/j.1751-7176.2012.00620.x, indexed in Pubmed: 22533660.
  34. Takahashi M. NLRP3 inflammasome as a key driver of vascular disease. Cardiovasc Res. 2022; 118(2): 372–385, doi: 10.1093/cvr/cvab010, indexed in Pubmed: 33483732.
  35. Krishnan SM, Ling YH, Huuskes BM, et al. Pharmacological inhibition of the NLRP3 inflammasome reduces blood pressure, renal damage, and dysfunction in salt-sensitive hypertension. Cardiovasc Res. 2019; 115(4): 776–787, doi: 10.1093/cvr/cvy252, indexed in Pubmed: 30357309.
  36. Ren XS, Tong Y, Ling Li, et al. NLRP3 Gene Deletion Attenuates Angiotensin II-Induced Phenotypic Transformation of Vascular Smooth Muscle Cells and Vascular Remodeling. Cell Physiol Biochem. 2017; 44(6): 2269–2280, doi: 10.1159/000486061, indexed in Pubmed: 29262411.
  37. Mazzali M, Hughes J, Kim YG, et al. Elevated uric acid increases blood pressure in the rat by a novel crystal-independent mechanism. Hypertension. 2001; 38(5): 1101–1106, doi: 10.1161/hy1101.092839, indexed in Pubmed: 11711505.
  38. Nair AR, Ebenezer PJ, Saini Y, et al. Angiotensin II-induced hypertensive renal inflammation is mediated through HMGB1-TLR4 signaling in rat tubulo-epithelial cells. Exp Cell Res. 2015; 335(2): 238–247, doi: 10.1016/j.yexcr.2015.05.011, indexed in Pubmed: 26033363.
  39. McCarthy CG, Wenceslau CF, Goulopoulou S, et al. Circulating mitochondrial DNA and Toll-like receptor 9 are associated with vascular dysfunction in spontaneously hypertensive rats. Cardiovasc Res. 2015; 107(1): 119–130, doi: 10.1093/cvr/cvv137, indexed in Pubmed: 25910936.
  40. Kim S, Goel R, Kumar A, et al. Imbalance of gut microbiome and intestinal epithelial barrier dysfunction in patients with high blood pressure. Clin Sci (Lond). 2018; 132(6): 701–718, doi: 10.1042/CS20180087, indexed in Pubmed: 29507058.
  41. Vinh A, Chen W, Blinder Y, et al. Inhibition and genetic ablation of the B7/CD28 T-cell costimulation axis prevents experimental hypertension. Circulation. 2010; 122(24): 2529–2537, doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.109.930446, indexed in Pubmed: 21126972.
  42. Pons H, Ferrebuz A, Quiroz Y, et al. Immune reactivity to heat shock protein 70 expressed in the kidney is cause of salt-sensitive hypertension. Am J Physiol Renal Physiol. 2013; 304(3): F289–F299, doi: 10.1152/ajprenal.00517.2012, indexed in Pubmed: 23097471.
  43. Kirabo A, Fontana V, de Faria APC, et al. DC isoketal-modified proteins activate T cells and promote hypertension. J Clin Invest. 2014; 124(10): 4642–4656, doi: 10.1172/JCI74084, indexed in Pubmed: 25244096.
  44. Liao YH, Wei YM, Wang M, et al. Autoantibodies against AT1-receptor and alpha1-adrenergic receptor in patients with hypertension. Hypertens Res. 2002; 25(4): 641–646, doi: 10.1291/hypres.25.641, indexed in Pubmed: 12358154.
  45. Luther HP, Homuth V, Wallukat G. Alpha 1-adrenergic receptor antibodies in patients with primary hypertension. Hypertension. 1997; 29(2): 678–682, doi: 10.1161/01.hyp.29.2.678, indexed in Pubmed: 9040456.
  46. Mikolajczyk TP, Guzik TJ. Adaptive Immunity in Hypertension. Curr Hypertens Rep. 2019; 21(9): 68, doi: 10.1007/s11906-019-0971-6, indexed in Pubmed: 31321561.
  47. Itani HA, Xiao L, Saleh MA, et al. CD70 Exacerbates Blood Pressure Elevation and Renal Damage in Response to Repeated Hypertensive Stimuli. Circ Res. 2016; 118(8): 1233–1243, doi: 10.1161/CIRCRESAHA.115.308111, indexed in Pubmed: 26988069.
  48. Mikolajczyk TP, Szczepaniak P, Vidler F, et al. Role of inflammatory chemokines in hypertension. Pharmacol Ther. 2021; 223: 107799, doi: 10.1016/j.pharmthera.2020.107799, indexed in Pubmed: 33359600.
  49. Nguyen H, Chiasson VL, Chatterjee P, et al. Interleukin-17 causes Rho-kinase-mediated endothelial dysfunction and hypertension. Cardiovasc Res. 2013; 97(4): 696–704, doi: 10.1093/cvr/cvs422, indexed in Pubmed: 23263331.
  50. Saleh MA, Norlander AE, Madhur MS. Inhibition of Interleukin 17-A but not Interleukin-17F Signaling Lowers Blood Pressure and Reduces End-organ Inflammation in Angiotensin II-induced Hypertension. JACC Basic Transl Sci. 2016; 1(7): 606–616, doi: 10.1016/j.jacbts.2016.07.009, indexed in Pubmed: 28280792.
  51. Neumann P, Gertzberg N, Johnson A. TNF-alpha induces a decrease in eNOS promoter activity. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2004; 286(2): L452–L459, doi: 10.1152/ajplung.00378.2002, indexed in Pubmed: 14555463.
  52. Sriramula S, Haque M, Majid DSA, et al. Involvement of tumor necrosis factor-alpha in angiotensin II-mediated effects on salt appetite, hypertension, and cardiac hypertrophy. Hypertension. 2008; 51(5): 1345–1351, doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.107.102152, indexed in Pubmed: 18391105.
  53. Korim WS, Elsaafien K, Basser JR, et al. In renovascular hypertension, TNF-α type-1 receptors in the area postrema mediate increases in cardiac and renal sympathetic nerve activity and blood pressure. Cardiovasc Res. 2019; 115(6): 1092–1101, doi: 10.1093/cvr/cvy268, indexed in Pubmed: 30358805.
  54. Lee DL, Sturgis LC, Labazi H, et al. Angiotensin II hypertension is attenuated in interleukin-6 knockout mice. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2006; 290(3): H935–H940, doi: 10.1152/ajpheart.00708.2005, indexed in Pubmed: 16284237.
  55. Naya M, Tsukamoto T, Morita K, et al. Plasma interleukin-6 and tumor necrosis factor-alpha can predict coronary endothelial dysfunction in hypertensive patients. Hypertens Res. 2007; 30(6): 541–548, doi: 10.1291/hypres.30.541, indexed in Pubmed: 17664858.
  56. Markó L, Kvakan H, Park JK, et al. Interferon-γ signaling inhibition ameliorates angiotensin II-induced cardiac damage. Hypertension. 2012; 60(6): 1430–1436, doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.112.199265, indexed in Pubmed: 23108651.
  57. Katsuki M, Hirooka Y, Kishi T, et al. Decreased proportion of Foxp3+ CD4+ regulatory T cells contributes to the development of hypertension in genetically hypertensive rats. J Hypertens. 2015; 33(4): 773–83; discussion 783, doi: 10.1097/HJH.0000000000000469, indexed in Pubmed: 25915882.
  58. Kasal DA, Barhoumi T, Li MW, et al. T regulatory lymphocytes prevent aldosterone-induced vascular injury. Hypertension. 2012; 59(2): 324–330, doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.111.181123, indexed in Pubmed: 22146512.
  59. Barhoumi T, Kasal DA, Li MW, et al. T regulatory lymphocytes prevent angiotensin II-induced hypertension and vascular injury. Hypertension. 2011; 57(3): 469–476, doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.110.162941, indexed in Pubmed: 21263125.
  60. Wang HX, Li WJ, Hou CL, et al. CD1d-dependent natural killer T cells attenuate angiotensin II-induced cardiac remodelling via IL-10 signalling in mice. Cardiovasc Res. 2019; 115(1): 83–93, doi: 10.1093/cvr/cvy164, indexed in Pubmed: 29939225.
  61. Shah KH, Shi P, Giani JF, et al. Myeloid Suppressor Cells Accumulate and Regulate Blood Pressure in Hypertension. Circ Res. 2015; 117(10): 858–869, doi: 10.1161/CIRCRESAHA.115.306539, indexed in Pubmed: 26294657.
  62. Kassan M, Galan M, Partyka M, et al. Interleukin-10 released by CD4(+)CD25(+) natural regulatory T cells improves microvascular endothelial function through inhibition of NADPH oxidase activity in hypertensive mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2011; 31(11): 2534–2542, doi: 10.1161/ATVBAHA.111.233262, indexed in Pubmed: 21817097.
  63. Lima VV, Zemse SM, Chiao CW, et al. Interleukin-10 limits increased blood pressure and vascular RhoA/Rho-kinase signaling in angiotensin II-infused mice. Life Sci. 2016; 145: 137–143, doi: 10.1016/j.lfs.2015.12.009, indexed in Pubmed: 26682936.